| 中文摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 缩写词 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-16页 |
| ·NO 调控气孔运动 | 第10-11页 |
| ·植物细胞NO 信号转导 | 第11页 |
| ·亚硝基谷胱甘肽与S-亚硝酰化 | 第11-13页 |
| ·亚硝基谷胱甘还原酶及其生物学功能 | 第13-16页 |
| 2 研究意义 | 第16-18页 |
| 3 材料与方法 | 第18-28页 |
| ·实验材料 | 第18页 |
| ·植物材料 | 第18页 |
| ·质粒载体和菌株 | 第18页 |
| ·实验试剂 | 第18页 |
| ·实验常用溶液 | 第18-19页 |
| ·抗生素 | 第19页 |
| ·培养基 | 第19-20页 |
| ·实验所用引物 | 第20-21页 |
| ·T-DNA 插入纯和突变体鉴定引物 | 第20页 |
| ·构建载体所用引物 | 第20-21页 |
| ·实验方法 | 第21-28页 |
| ·拟南芥种植方法 | 第21页 |
| ·拟南芥杂交方法 | 第21页 |
| ·拟南芥DNA 提取方法 | 第21页 |
| ·拟南芥DNA 纯合体鉴定方法 | 第21-22页 |
| ·表皮条生物分析 | 第22页 |
| ·测定植株失水率实验 | 第22页 |
| ·远红外热图分析实验 | 第22-23页 |
| ·总RNA 的提取和cDNA 的合成 | 第23-24页 |
| ·重组质粒载体的构建 | 第24页 |
| ·PCR 产物的回收和纯化 | 第24页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第24-25页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的转化 | 第25页 |
| ·重组质粒的鉴定 | 第25页 |
| ·农杆菌介导的植株的转化 | 第25页 |
| ·拟南芥转基因植物的筛选 | 第25-26页 |
| ·β-葡糖苷酸酶（GUS）的组织化学鉴定 | 第26-28页 |
| 4 实验结果与分析 | 第28-38页 |
| ·gsnor1 插入突变体的鉴定和表型分析 | 第28-31页 |
| ·gsnor1 T-DNA 插入突变体的鉴定 | 第28-29页 |
| ·GSNO 对气孔开度的影响 | 第29页 |
| ·gsnor1 与WT 相比失水率较快 | 第29-30页 |
| ·突变体与野生型远红外分析 | 第30-31页 |
| ·gsnor1 参与气孔关闭调节过程 | 第31-33页 |
| ·gsnor1 气孔表型分析 | 第31-32页 |
| ·gsnor1 中Ca~(2+)介导气孔的关闭 | 第32页 |
| ·GSNOR1 在气孔中特异表达 | 第32-33页 |
| ·GSNOR1-OE 转基因植物的鉴定和分析 | 第33-35页 |
| ·GSNOR1 超表达株系中GSNOR1 基因表达水平检测 | 第33-34页 |
| ·超表达植株失水和气孔表型分析 | 第34-35页 |
| ·GSNOR1 参与ABA 诱导的气孔关闭的信号转导分析 | 第35-38页 |
| ·ABA 信号转导相关突变体的鉴定 | 第35页 |
| ·abi1 和abi2 缺失突变体失水和气孔表型分析 | 第35-36页 |
| ·ost1 缺失突变体失水和气孔表型分析 | 第36页 |
| ·双突纯合体鉴定 | 第36-37页 |
| ·双缺失突变体的气孔表型 | 第37-38页 |
| 5 讨论 | 第38-40页 |
| ·GSNOR1 参与气孔运动 | 第38页 |
| ·在保卫细胞中ABA、SNP 调控GSNOR1 的表达 | 第38页 |
| ·Ca~(2+)可能介导GSNOR1 对气孔的影响 | 第38-40页 |
| 6 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
