| 中文摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-15页 |
| 绪言 | 第15-20页 |
| 良性胆管瘢痕狭窄形成机制、影响因素以及干预因素简图 | 第20-21页 |
| 第一部分 良性胆管瘢痕形态学特征及发生机制的探讨 | 第21-83页 |
| 实验一 良性胆管瘢痕形态学特征和CD_(68)、TGFβ_1、a-SMA表达的实验研究 | 第21-40页 |
| 前言 | 第21页 |
| 材料和方法 | 第21-25页 |
| 1.材料 | 第21-22页 |
| 2.方法 | 第22-25页 |
| ·光镜观察 | 第22-23页 |
| ·电镜观察 | 第23页 |
| ·免疫组织化学法检测CD_(68)、TGFβ_1、a-SMA的表达 | 第23-24页 |
| ·统计学处理 | 第24-25页 |
| 结果 | 第25-37页 |
| 讨论 | 第37-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 实验二 良性胆管瘢痕组织中c-myc、c-fos的表达和相关性研究 | 第40-51页 |
| 引言 | 第40页 |
| 材料和方法 | 第40-42页 |
| 1.材料 | 第40-41页 |
| 2.方法 | 第41页 |
| ·免疫组织化学法检测c-myc的表达 | 第41页 |
| ·免疫组织化学法检测c-fos的表达 | 第41页 |
| ·阳性对照实验 | 第41页 |
| ·阴性对照实验 | 第41页 |
| 3.结果判定标准 | 第41页 |
| 4.统计学处理 | 第41-42页 |
| 结果 | 第42-48页 |
| 讨论 | 第48-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 实验三 良性胆管瘢痕组织中Survivin、bFGF、VEGF、、CD1a表达和MVD检测的实验研究 | 第51-71页 |
| 引言 | 第51页 |
| 材料与方法 | 第51-55页 |
| 1.材料 | 第51-53页 |
| 2.方法 | 第53-55页 |
| ·免疫组织化学法检测Survivin的表达 | 第53-54页 |
| ·免疫组织化学法检测bFGF的表达 | 第54页 |
| ·免疫组织化学法检测VEGF的表达 | 第54页 |
| ·免疫组织化学法检测MVD | 第54页 |
| ·免疫组织化学法检测CD1a的表达 | 第54页 |
| ·阳性对照实验 | 第54页 |
| ·阴性对照实验 | 第54-55页 |
| 3.免疫组化结果判定标准 | 第55页 |
| 4.统计学方法 | 第55页 |
| 结果 | 第55-66页 |
| 讨论 | 第66-69页 |
| 结论 | 第69-71页 |
| 实验四 良性胆管瘢痕组织中Bcl-2、Bax的表达及相关性研究 | 第71-83页 |
| 引言 | 第71页 |
| 材料和方法 | 第71-74页 |
| 1.材料 | 第71-72页 |
| 2.方法 | 第72-74页 |
| ·RT-PCR检测良性胆管瘢痕中Bcl-2 m RNA、Bax m RNA的表达量 | 第72-74页 |
| ·免疫组织化学法 | 第74页 |
| ·免疫组织化学法检测Bcl-2的表达 | 第74页 |
| ·免疫组织化学法检测Bax的表达 | 第74页 |
| ·结果判定 | 第74页 |
| 3.统计学方法 | 第74页 |
| 结果 | 第74-80页 |
| 讨论 | 第80-82页 |
| 结论 | 第82-83页 |
| 第二部分 良性胆管瘢痕干预因素的实验研究 | 第83-152页 |
| 实验五 雷公藤多甙对成纤维细胞影响的实验研究 | 第83-97页 |
| 引言 | 第83页 |
| 材料和方法 | 第83-86页 |
| 1.材料 | 第83-84页 |
| 2.方法 | 第84-86页 |
| ·胆管瘢痕组织成纤维细胞培养 | 第84-85页 |
| ·雷公藤溶液配置方法 | 第85页 |
| ·雷公藤多甙对成纤维细胞细胞的影响 | 第85-86页 |
| ·倒置显微镜观察 | 第85页 |
| ·流式细胞仪TUNEL法检测细胞凋亡 | 第85-86页 |
| ·MTT法检测雷公藤溶液对成纤维细胞增殖的影响 | 第86页 |
| ·成纤维细胞电镜样品的制备及电镜检查 | 第86页 |
| 3. 统计学处理 | 第86页 |
| 结果 | 第86-95页 |
| 讨论 | 第95-96页 |
| 结论 | 第96-97页 |
| 实验六 人胆管瘢痕和脂肪组织裸鼠动物模型建立以及脂肪对裸鼠移植胆管瘢痕作用的实验研究 | 第97-136页 |
| 引言 | 第97页 |
| 材料和方法 | 第97-106页 |
| 1.材料 | 第97-98页 |
| 2.方法 | 第98-106页 |
| ·人大网膜脂肪组织分泌脂肪细胞因子的检测 | 第98-102页 |
| ·脂肪组织提取液的制备 | 第98页 |
| ·ELISA法检测大网膜脂肪组织提取液及血液中TGF-β_1的表达 | 第98-99页 |
| ·流式细胞仪CBA法检测大网膜脂肪组织提取液中辅助性T细胞Th1/Th2细胞因子 | 第99-102页 |
| ·人胆管瘢痕组织和脂肪组织裸鼠动物模型建立以及脂肪对裸鼠移植胆管瘢痕作用的实验研究 | 第102-105页 |
| ·实验动物模型的建立 | 第102-104页 |
| ·实验分组 | 第104-105页 |
| ·实验观察指标 | 第105页 |
| ·裸鼠和移植物存活情况 | 第105页 |
| ·肉眼观察 | 第105页 |
| ·光镜观察 | 第105页 |
| ·电镜观察 | 第105页 |
| ·大网膜脂肪提取液对培养成纤维细胞的影响 | 第105-106页 |
| ·倒置显微镜下观察成纤维细胞细胞形态和生长情况 | 第105-106页 |
| ·流式细胞仪TUNEL法检测细胞凋亡 | 第106页 |
| ·MTT法检测细胞增殖 | 第106页 |
| ·成纤维细胞电镜样品的制备及电镜观察 | 第106页 |
| ·统计学处理 | 第106页 |
| 结果 | 第106-131页 |
| 讨论 | 第131-135页 |
| 结论 | 第135-136页 |
| 实验七 胆汁对良性胆管瘢痕影响的实验研究 | 第136-152页 |
| 引言 | 第136页 |
| 材料和方法 | 第136-138页 |
| 1.材料 | 第136页 |
| 2.方法 | 第136-138页 |
| ·细胞培养 | 第136页 |
| ·倒置显微镜观察胆汁对成纤维细胞的影响 | 第136-137页 |
| ·电镜观察胆汁对成纤维细胞的影响 | 第137页 |
| ·MTT法检测胆汁对成纤维细胞增殖活性的影响 | 第137页 |
| ·流式细胞仪TUNEL法检测细胞凋亡 | 第137-138页 |
| ·统计学分析 | 第138页 |
| 结果 | 第138-148页 |
| 讨论 | 第148-151页 |
| 结论 | 第151-152页 |
| 全文总结 | 第152-155页 |
| 参考文献 | 第155-159页 |
| 中文详细摘要 | 第159-162页 |
| 英文详细摘要 | 第162-166页 |
| 文献综述 | 第166-193页 |
| 正文 | 第166-188页 |
| 参考文献 | 第188-193页 |
| 本课题主要特色和创新 | 第193-195页 |
| 研究生简介 | 第195-196页 |
| 致谢 | 第196-197页 |
| 攻读博士研究生期间科研和学习情况 | 第197-198页 |
