| 摘要 | 第1-3页 |
| Summary | 第3-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-32页 |
| 第一节 植物遗传转化研究进展 | 第12-17页 |
| ·遗传转化发展史 | 第12-13页 |
| ·转基因植物的检测与鉴定 | 第13-16页 |
| ·植物遗传转化的发展前景 | 第16-17页 |
| 第二节 遗传转化方法 | 第17-21页 |
| ·载体介导转化法 | 第17-18页 |
| ·直接转化法 | 第18-20页 |
| ·以植物自身细胞为媒介的基因转化法 | 第20-21页 |
| 第三节双子叶植物遗传转化研究进展 | 第21-23页 |
| ·抗病基因遗传转化 | 第22页 |
| ·抗虫基因遗传转化 | 第22-23页 |
| ·抗逆境基因遗传转化 | 第23页 |
| ·抗除草剂基因遗传转化 | 第23页 |
| ·关于品质基因遗传转化研究 | 第23页 |
| ·展望 | 第23页 |
| 第四节 单子叶植物遗传转化研究 | 第23-26页 |
| ·农杆菌介导单子叶植物的可行性 | 第23页 |
| ·影响农杆菌介导单子叶植物基因转化效率的因素 | 第23-25页 |
| ·单子叶植物获得遗传转化成功的例子 | 第25页 |
| ·问题与展望 | 第25-26页 |
| 第五节 白三叶生物技术研究进展 | 第26-27页 |
| ·组织培养 | 第26页 |
| ·遗传转化 | 第26-27页 |
| ·遗传变异研究 | 第27页 |
| ·展望 | 第27页 |
| 第六节 中华结缕草生物技术研究进展 | 第27-29页 |
| ·组织培养 | 第27-28页 |
| ·转基因研究 | 第28页 |
| ·遗传分化的RAPD 分析 | 第28-29页 |
| ·展望 | 第29页 |
| 第七节 本研究的目的和意义 | 第29-32页 |
| ·选题背景与研究意义 | 第29-30页 |
| ·主要研究内容 | 第30页 |
| ·研究的技术路线 | 第30-32页 |
| 第二章 用农杆菌浸种法建立白三叶的遗传转化体系 | 第32-54页 |
| 第一节 白三叶种子发芽实验 | 第32-34页 |
| 1 材料与方法 | 第32-33页 |
| ·植物材料 | 第32页 |
| ·发芽率和发芽势测定 | 第32页 |
| ·发芽过程种子的形态结构观察 | 第32-33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-34页 |
| ·NAA 浸种对白三叶种子发芽的影响 | 第33页 |
| ·种子萌发过程中的形态结构变化 | 第33-34页 |
| 3 小结 | 第34页 |
| 第二节 卡那霉素筛选实验 | 第34-38页 |
| 1 材料与方法 | 第35页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35页 |
| 2 结果与分析 | 第35-38页 |
| ·卡那霉素对白三叶种子萌发的影响 | 第35-37页 |
| ·卡那霉素对白三叶幼苗生长的影响 | 第37-38页 |
| 3 小结 | 第38页 |
| 第三节 白三叶遗传转化体系的优化 | 第38-46页 |
| 1 材料与方法 | 第38-42页 |
| ·材料 | 第38-40页 |
| ·方法 | 第40-42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-46页 |
| ·催芽时间对白三叶转化效率的影响 | 第42-43页 |
| ·农杆菌菌液浓度和浸种时间对转化效率的影响 | 第43-44页 |
| ·共培养时间对白三叶转化效率的影响 | 第44-45页 |
| ·乙酰丁香酮（AS）对转化效率的影响 | 第45页 |
| ·侵染方式对转化效率的影响 | 第45-46页 |
| 3 小结 | 第46页 |
| 第四节 抗性植株的检测 | 第46-54页 |
| 1 材料方法 | 第46-51页 |
| ·植物材料 | 第46页 |
| ·药品、试剂 | 第46-48页 |
| ·植物DNA 的微量提取（CTAB 法） | 第48-49页 |
| ·PCR 检测 | 第49-50页 |
| ·GUS 染色 | 第50页 |
| ·整株PCR 检测 | 第50-51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-53页 |
| ·PCR 叶片检测 | 第51-52页 |
| ·GUS 检测 | 第52页 |
| ·整株PCR 检测 | 第52-53页 |
| 3 小结 | 第53-54页 |
| 第三章 用农杆菌浸种法建立中华结缕草的遗传转化体系 | 第54-68页 |
| 第一节 中华结缕草种子发芽实验 | 第54-57页 |
| 1 材料与方法 | 第54页 |
| ·参试材料 | 第54页 |
| ·实验方法 | 第54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-56页 |
| ·不同浸种处理对中华结缕草种子发芽势的影响 | 第54-55页 |
| ·浸种处理后第20d 种子萌发情况 | 第55页 |
| ·浸种处理在第30d 种子萌发情况 | 第55-56页 |
| 3 小结 | 第56-57页 |
| 第二节 卡那霉素筛选实验 | 第57-60页 |
| 1 材料与方法 | 第57页 |
| ·植物材料 | 第57页 |
| ·实验方法 | 第57页 |
| 2 结果与分析 | 第57-59页 |
| ·卡那霉素处理对中华结缕草种子萌发的影响 | 第57-59页 |
| ·卡那霉素浓度对中华结缕草种子萌发与地上部生长的影响 | 第57-58页 |
| ·不同卡那霉素浓度对地下部生长的影响 | 第58-59页 |
| ·不同的卡那霉素处理时间对植株生长的影响 | 第59页 |
| ·卡那霉素对中华结缕草幼苗生长的影响 | 第59页 |
| 3 小结 | 第59-60页 |
| 第三节 遗传转化体系的优化 | 第60-65页 |
| 1 材料与方法 | 第60-61页 |
| ·材料 | 第60页 |
| ·方法 | 第60-61页 |
| 2 结果与分析 | 第61-65页 |
| ·催芽时间对中华结缕草转化效率的影响 | 第61-62页 |
| ·农杆菌浓度对中华结缕草转化效率的影响 | 第62页 |
| ·侵染时间对中华结缕草转化效率的影响 | 第62-63页 |
| ·共培养时间对中华结缕草转化效率的影响 | 第63页 |
| ·乙酰丁香酮加入量对中华结缕草转化效率的影响 | 第63-64页 |
| ·真空处理方式对中华结缕草转化效率的影响 | 第64-65页 |
| 3 小结 | 第65页 |
| 第四节 抗性植株的检测 | 第65-68页 |
| 1 材料与方法 | 第65页 |
| ·植物材料 | 第65页 |
| ·药品、试剂 | 第65页 |
| ·DNA 提取 | 第65页 |
| ·PCR 检测 | 第65页 |
| ·GUS 染色 | 第65页 |
| 2 结果与分析 | 第65-67页 |
| ·PCR 叶片检测 | 第65-66页 |
| ·GUS 检测 | 第66-67页 |
| ·整株PCR 检测 | 第67页 |
| 3 小结 | 第67-68页 |
| 第四章 讨论 | 第68-72页 |
| ·中华结缕草和白三叶种子萌发研究 | 第68页 |
| ·卡那霉素筛选方法优化 | 第68-69页 |
| ·遗传转化体系建立 | 第69-71页 |
| ·催芽时间 | 第69页 |
| ·农杆菌浓度、侵染时间与共培养时间 | 第69-70页 |
| ·附加化学物质及侵染方式 | 第70-71页 |
| ·转基因植株的检测 | 第71页 |
| ·本研究的下一步工作 | 第71-72页 |
| 第五章 结论 | 第72-74页 |
| ·白三叶浸种法遗传转化优化体系 | 第72页 |
| ·中华结缕草浸种法遗传转化优化体系 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 附图 | 第83-87页 |
| 个人简介 | 第87-88页 |
| 导师简介 | 第88-89页 |