| 英文缩略词 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| 英文摘要 | 第12-16页 |
| 正文:重组人内抑素诱导佐剂性关节炎大鼠滑膜细胞凋亡的作用及机制 | 第16-69页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 实验材料 | 第18-21页 |
| 1.动物 | 第18页 |
| 2.药品与试剂 | 第18-20页 |
| 3.仪器与设备 | 第20-21页 |
| 实验方法 | 第21-32页 |
| (一) rh-End对佐剂性关节炎AA大鼠继发性炎症的治疗作用 | 第21-22页 |
| 1.AA大鼠模型的诱导 | 第21页 |
| 2.动物分组及给药方案 | 第21页 |
| 3.关节肿胀度测定 | 第21页 |
| 4.多发性关节炎指数评分 | 第21页 |
| 5.关节滑膜组织病理组织学检查 | 第21-22页 |
| 6.透射电镜检查滑膜细胞超微结构改变 | 第22页 |
| (二) 大鼠滑膜细胞的分离、培养与鉴定 | 第22-24页 |
| 1.大鼠滑膜组织的采集 | 第22页 |
| 2.胶原酶-胰蛋白酶消化法 | 第22-23页 |
| 3.组织块培养法 | 第23页 |
| 4.滑膜细胞的鉴定 | 第23页 |
| 5.滑膜细胞上清液的制备 | 第23-24页 |
| (三) 滑膜细胞的增殖与凋亡 | 第24-27页 |
| 1.滑膜细胞的增殖反应 | 第24页 |
| 2.琼脂糖凝胶电泳观察AA大鼠滑膜组织的凋亡 | 第24-25页 |
| 3.TUNEL检测滑膜细胞凋亡 | 第25页 |
| 4.Annexin V/PI双染色法检测成纤维滑膜细胞的凋亡率 | 第25-26页 |
| 5.IL-1β、TNF-α含量的测定 | 第26-27页 |
| (四) rh-End对滑膜组织中促血管生成因子mRNA(PDGF、VEGF、FGF及TNF-α)表达的影响 | 第27-31页 |
| 1.大鼠滑膜组织总RNA的提取 | 第27-28页 |
| 2.cDNA第一链的合成 | 第28页 |
| 3.引物的设计 | 第28-29页 |
| 4.实时荧光定量PCR反应 | 第29-31页 |
| 统计学处理 | 第31-32页 |
| 实验结果 | 第32-52页 |
| (1) rh-End对AA大鼠继发性炎症反应的作用 | 第32-39页 |
| 1.rh-End对AA大鼠非致炎侧足肿胀的影响 | 第32-33页 |
| 2.rh-End对AA大鼠多发性关节指数的影响 | 第33-34页 |
| 3.rh-End对AA大鼠膝关节病理组织学的影响 | 第34-37页 |
| 4.透射电镜观察 | 第37-39页 |
| (2) 大鼠滑膜成纤维样细胞的形态学观察及鉴定 | 第39-41页 |
| 1.光镜观察 | 第39-41页 |
| (3) rh-End对滑膜细胞增殖能力的影响 | 第41-43页 |
| 1.rh-End体内用药对滑膜细胞增殖能力的影响 | 第41页 |
| 2.rh-End体外用药对成纤维样滑膜细胞增殖能力的影响 | 第41-43页 |
| (4) rh-End诱导成纤维样滑膜细胞凋亡的作用 | 第43-45页 |
| 1.DNA梯度凝胶电泳观察rh-End诱导滑膜组织凋亡的作用 | 第43页 |
| 2.TUNEL观察rh-End诱导滑膜细胞凋亡的作用 | 第43页 |
| 3.rh-End诱导AA FLS早期凋亡的作用 | 第43-45页 |
| (5) rh-Edn对滑膜细胞分泌功能的影响 | 第45-48页 |
| 1.rh-End对AA大鼠滑膜细胞培养上清液IL-1β、TNF-α含量的影响 | 第45页 |
| 2.rh-End对AA大鼠滑膜细胞TNF-α mRNA基因表达水平的影响 | 第45-48页 |
| (6) rh-End对滑膜组织VEGF、PDGF、FGF mRNA表达的影响 | 第48-52页 |
| 讨论 | 第52-62页 |
| 小结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 附录一:个人简历 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 综述 | 第73-97页 |
| 参考文献 | 第87-97页 |
