| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 英文缩略语对照表 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 1 问题的提出 | 第13-14页 |
| 2 论文的主要研究内容 | 第14-15页 |
| 3 论文的创新点 | 第15-16页 |
| 第一部分 毛细管电泳拆分手性药物 | 第16-97页 |
| 第一章 毛细管电泳在手性分离中的应用进展 | 第16-35页 |
| 1．1 手性化合物拆分的意义 | 第16页 |
| 1．2 手性化合物拆分的方法 | 第16-17页 |
| 1．3 毛细管电泳拆分手性化合物 | 第17-22页 |
| 1．3．1 毛细管电泳手性分离的原理 | 第17-18页 |
| 1．3．2 环糊精手性识别机理 | 第18-20页 |
| 1．3．3 常规拆分策略 | 第20-22页 |
| 1．4 毛细管电泳手性拆分现状 | 第22-26页 |
| 1．4．1 水介质毛细管电泳手性分离 | 第22-23页 |
| 1．4．2 非水介质毛细管电泳手性分离 | 第23-26页 |
| 1．5 本部分研究工作的实验设想 | 第26-31页 |
| 参考文献 | 第31-35页 |
| 第二章 水介质毛细管电泳拆分抗胆碱能药物的方法研究 | 第35-45页 |
| 2．1 概述 | 第35-36页 |
| 2．2 实验部分 | 第36-37页 |
| 2．2．1 仪器 | 第36页 |
| 2．2．2 试剂 | 第36页 |
| 2．2．3 溶液配制 | 第36页 |
| 2．2．4 毛细管电泳实验方法 | 第36-37页 |
| 2．3 结果与讨论 | 第37-43页 |
| 2．3．1 均匀实验设计拆分抗胆碱能药物对映体 | 第37-39页 |
| 2．3．2 操作条件对抗胆碱能药物对映体拆分的影响 | 第39-41页 |
| 2．3．3 不同缓冲体系对抗胆碱能药物对映体拆分的影响 | 第41-42页 |
| 2．3．4 环糊精种类对抗胆碱能药物对映体拆分的影响 | 第42-43页 |
| 2．4 小结 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-45页 |
| 第三章 非水介质毛细管电泳拆分抗胆碱能药物的方法研究 | 第45-64页 |
| 3．1 引言 | 第45-46页 |
| 3．2 实验部分 | 第46-47页 |
| 3．2．1 仪器 | 第46页 |
| 3．2．2 试剂 | 第46页 |
| 3．2．3 溶液配制 | 第46-47页 |
| 3．2．4 实验方法 | 第47页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第47-62页 |
| 3．3．1 有机溶剂及背景电解质的选择 | 第47页 |
| 3．3．2 HDMS-β-CD浓度的影响 | 第47-50页 |
| 3．3．3 背景电解质浓度和溶液酸度的影响 | 第50-51页 |
| 3．3．4 电压的影响 | 第51-52页 |
| 3．3．5 手性添加剂种类的影响 | 第52-54页 |
| 3．3．6 毛细管内径和柱长的影响 | 第54-55页 |
| 3．3．7 进样量对拆分的影响 | 第55-57页 |
| 3．3．8 方法的可靠性 | 第57-60页 |
| 3．3．9 手性分离抗胆碱能药物和相似结构的中间体 | 第60-62页 |
| 3．4 小结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-64页 |
| 第四章 水/非水介质毛细管电泳拆分手性药物的比较 | 第64-90页 |
| 4．1 引言 | 第64页 |
| 4．2 实验部分 | 第64页 |
| 4．3 结果与讨论 | 第64-88页 |
| 4．3．1 拆分抗胆碱能药物的比较 | 第64-68页 |
| 4．3．2 拆分其它药物的比较 | 第68-79页 |
| 4．3．2．1 拆分佐匹克隆 | 第68-70页 |
| 4．3．2．2 拆分洛非西定 | 第70-71页 |
| 4．3．2．3 拆分依瓦斯他仃 | 第71-72页 |
| 4．3．2．4 拆分克伦特罗 | 第72-74页 |
| 4．3．2．5 拆分罗格列酮 | 第74-76页 |
| 4．3．2．6 拆分安非他明 | 第76-77页 |
| 4．3．2．7 拆分其他药物 | 第77-79页 |
| 4．3．3 水/非水介质毛细管电泳拆分手性药物的比较 | 第79-80页 |
| 4．3．4 不同缓冲体系拆分手性药物 | 第80-81页 |
| 4．3．5 不同种类环糊精拆分手性药物的情况 | 第81-85页 |
| 4．3．6 环糊精及其衍生物拆分机理探讨 | 第85-88页 |
| 4．4 小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-90页 |
| 第五章 CE拆分手性药物在新药合成及质控中的应用 | 第90-97页 |
| 5．1 引言 | 第90-91页 |
| 5．2 实验部分 | 第91-92页 |
| 5．2．1 仪器与试剂 | 第91页 |
| 5．2．2 溶液配制 | 第91-92页 |
| 5．2．2．1 佐米曲坦 | 第91页 |
| 5．2．2．2 安非他明及其盐溶液 | 第91页 |
| 5．2．2．3 背景缓冲液 | 第91-92页 |
| 5．3 结果与讨论 | 第92-96页 |
| 5．3．1 毛细管电泳拆分佐米曲坦及其质量控制 | 第92-94页 |
| 5．3．1．1 佐米曲坦对映体拆分方法的建立 | 第92页 |
| 5．3．1．2 方法的限量实验 | 第92-93页 |
| 5．3．1．3 不同批号样品的测定 | 第93-94页 |
| 5．3．2 毛细管电泳拆分安非他明及其酒石酸盐的应用 | 第94-96页 |
| 5．3．2．1 安非他明及其酒石酸盐拆分方法的确定 | 第94页 |
| 5．3．2．2 拆分安非他明的酒石酸盐 | 第94-95页 |
| 5．3．2．3 不同条件下获得的样品测定 | 第95-96页 |
| 5．4 小结 | 第96页 |
| 参考文献 | 第96-97页 |
| 第二部分 建立筛选抗菌中药有效成分的高通量试验方法 | 第97-121页 |
| 第六章 毛细管电泳在微生物分析中的应用进展 | 第97-109页 |
| 6．1 微生物分析的意义 | 第97页 |
| 6．2 微生物的分析现状 | 第97-102页 |
| 6．2．1 CE分离分析病毒 | 第99-100页 |
| 6．2．2 CE分离表征细菌 | 第100-101页 |
| 6．2．3 CE分离分析微生物的机理研究 | 第101-102页 |
| 6．3 高通量药物筛选的意义 | 第102-103页 |
| 6．4 论文本部分研究工作的实验设想 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-109页 |
| 第七章 毛细管电泳分析大肠杆菌及筛选中药有效成分 | 第109-121页 |
| 7．1 引言 | 第109-110页 |
| 7．2 实验部分 | 第110-111页 |
| 7．2．1 仪器与材料 | 第110页 |
| 7．2．2 样品制备 | 第110页 |
| 7．2．3 溶液配制 | 第110-111页 |
| 7．2．4 毛细管电泳实验方法 | 第111页 |
| 7．3 结果与讨论 | 第111-119页 |
| 7．3．1 建立大肠杆菌的毛细管电泳分析方法 | 第111-115页 |
| 7．3．1．1 缓冲体系的选择 | 第111-112页 |
| 7．3．1．2 细菌的吸附 | 第112-113页 |
| 7．3．1．3 细菌电泳峰的定性 | 第113-114页 |
| 7．3．1．4 细菌培养时间和存放方式的影响 | 第114-115页 |
| 7．3．2 大肠杆菌的毛细管电泳表征 | 第115-116页 |
| 7．3．2．1 活菌样品的电泳图 | 第115页 |
| 7．3．2．2 灭活细菌的电泳图 | 第115-116页 |
| 7．3．2．3 大肠杆菌JM109与氨苄之间的作用 | 第116页 |
| 7．3．3 抗菌中药有效成分的筛选 | 第116-119页 |
| 7．3．3．1 中药试液的制备 | 第116页 |
| 7．3．3．2 中药与大肠杆菌之间的作用 | 第116-117页 |
| 7．3．3．3 CE方法检测中药细菌之间的作用 | 第117-119页 |
| 7．4 小结 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-121页 |
| 结语 | 第121-123页 |
| 博士后期间撰写与发表论文目录 | 第123-125页 |
| Chiral separation of drug enantiomers in nonaquous capillary electrophoresis | 第125-131页 |
| Nonaquous capillary electrophoresis chiral separation of anticholinergic drugs with HDMS-β-CD | 第131-136页 |
| 致谢 | 第136页 |
