摘要 | 第1-7页 |
英文摘要 | 第7-9页 |
缩略语 | 第9-10页 |
第一部分 文献综述 | 第10-26页 |
第一章 离子束生物工程技术的研究进展 | 第10-21页 |
1 离子束生物工程学研究进展 | 第10-12页 |
·存活—剂量生物学效应模型的研究 | 第10页 |
·注入离子与生物材料相互作用的研究 | 第10-11页 |
·离子注入生物材料的细胞生物学效应研究 | 第11-12页 |
·离子注入在生化水平与分子生物学水平上的研究 | 第12页 |
2 低能离子注入与生物材料相互作用的基本原理 | 第12-16页 |
·荷能离子注入生物体相互作用 | 第12-13页 |
·离子注入生物小分子的损伤 | 第13-14页 |
·离子注入DNA 的损伤 | 第14-15页 |
·离子注入细胞损伤效应 | 第15页 |
·离子注入生物学效应 | 第15-16页 |
3 离子束注入技术的应用 | 第16-21页 |
·离子束农作物诱变育种 | 第17页 |
·离子束注入微生物诱变育种 | 第17-18页 |
·离子束介导转基因 | 第18-21页 |
第二章 豆科牧草新品种选育的回顾和进展 | 第21-26页 |
1. 我国牧草育种工作发展现状 | 第21-24页 |
2. 生物技术在豆科牧草遗传育种中的回顾与进展 | 第24-25页 |
3. 低能离子注入紫花苜蓿生物学效应的意义 | 第25-26页 |
第二部分 实验部分 | 第26-59页 |
一 低能氩离子注入对紫花苜蓿的农艺效应 | 第27-33页 |
1 实验材料、试剂和设备 | 第27页 |
·植物材料 | 第27页 |
·实验试剂 | 第27页 |
·主要设备 | 第27页 |
2 实验方法 | 第27-29页 |
·低能氩离子处理 | 第27-28页 |
·光照培养 | 第28页 |
·培育发芽 | 第28页 |
·统计发芽率等值并对发芽率统计分析 | 第28页 |
·染色体标本制备 | 第28页 |
·细胞学观察及统计 | 第28-29页 |
3 实验结果与分析 | 第29-33页 |
·Ar+离子注入对紫花苜蓿种子发芽及生长的影响 | 第29-31页 |
·低能氩离子束注入对幼苗株高、百株干重的影响 | 第31-33页 |
二、低能氩离子注入紫花苜蓿后幼苗的脂质过氧化的影响及过氧化物酶同工酶谱分析 | 第33-40页 |
1 实验材料、试剂和设备 | 第33-34页 |
·植物材料 | 第33页 |
·实验试剂 | 第33-34页 |
2 实验方法 | 第34-35页 |
·低能氩离子处理 | 第34页 |
·光照培养 | 第34页 |
·过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CAT)、超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第34页 |
·过氧化物酶同工酶酶谱分析 | 第34-35页 |
3、实验结果与分析 | 第35-40页 |
·Ar+离子注入对陇东紫花苜蓿幼苗POD、CAT、SOD 酶活性的影响 | 第35-38页 |
·过氧化物酶同工酶酶谱分析 | 第38-40页 |
三、低能离子束盐角草全DNA 转入紫花苜蓿 | 第40-59页 |
1 实验材料、试剂和设备 | 第41页 |
2 实验方法 | 第41-45页 |
·离子束注入处理及转盐角草全DNA | 第41-42页 |
·变异植株的筛选(耐盐性试验) | 第42页 |
·外源DNA 的提取 | 第42-43页 |
·DNA 的检测 | 第43页 |
·转化的紫花苜蓿RAPD 反应程序 | 第43-45页 |
3 结果与分析 | 第45-54页 |
·后代植株的耐盐性 | 第45页 |
·紫花苜蓿幼苗基因组DNA 的提取 | 第45-46页 |
·RAPD 方法稳定性 | 第46-47页 |
·模板 DNA 量对RAPD 带的影响 | 第47-48页 |
·引物浓度对RAPD 带的影响 | 第48-49页 |
·Mg~(2+)浓度对RAPD 带的影响 | 第49页 |
·dNTP 浓度对RAPD 带的影响 | 第49-50页 |
·Taq 酶单位对RAPD 带的影响 | 第50-51页 |
·盐角草DNA 导入紫花苜蓿的RAPD 分子验证 | 第51-54页 |
4 讨论 | 第54-59页 |
·所用引物及扩增结果 | 第54-56页 |
·RAPD 技术检测紫花苜蓿变异的可靠性 | 第56-57页 |
·氩离子注入转化紫花苜蓿的 RAPD 分子验证 | 第57-59页 |
第四部分 结论与展望 | 第59-62页 |
参考文献 | 第62-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
作者介绍 | 第69页 |