| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 前言 | 第9-10页 |
| 第一部分 人 apoA-I 与基因工程 apoA-I 的分离纯化、鉴定及生物活性测定 | 第10-33页 |
| 引言 | 第10页 |
| 1 材料试剂和仪器 | 第10-13页 |
| ·材料及细胞模型及实验动物 | 第10-11页 |
| ·试剂 | 第11页 |
| ·溶液 | 第11-13页 |
| ·主要仪器 | 第13页 |
| 2 实验方法 | 第13-19页 |
| 3 结果与分析 | 第19-31页 |
| ·人血浆 apoA-I 的提取 | 第19-21页 |
| ·从血制品废弃组分 FⅣ中提取 apoA-I | 第21-23页 |
| ·从基因工程毕赤酵母菌表达发酵液中获取 apoA-I | 第23-27页 |
| ·apoA-Ⅰ生物活性的检测 | 第27-31页 |
| 4 讨论 | 第31-32页 |
| 小结 | 第32-33页 |
| 第二部分 阿昔洛韦的前体药物阿昔洛韦棕榈酸酯的合成与分析 | 第33-42页 |
| 引言 | 第33页 |
| 1 试剂及仪器 | 第33-34页 |
| ·试剂 | 第33页 |
| ·溶液 | 第33-34页 |
| 2 实验方法 | 第34-35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-41页 |
| ·阿昔洛韦棕榈酸酯合成与纯化 | 第35-36页 |
| ·化合物理化性质 | 第36页 |
| ·化合物的结构表征 | 第36-39页 |
| ·ＨＰＬＣ 流动相的组成与流速的确定 | 第39页 |
| ·外标工作曲线的建立 | 第39页 |
| ·回收率的精密度 | 第39页 |
| ·不同反应时间反应液中阿昔洛韦棕榈酸酯的含量检测 | 第39-41页 |
| 4 讨论 | 第41页 |
| 小结 | 第41-42页 |
| 第三部分 重组 HDL-药物复合物的制备及其体外抗乙肝病毒和体内肝靶向作用的研究 | 第42-72页 |
| 引言 | 第42-43页 |
| 1 材料试剂和仪器 | 第43-44页 |
| ·细胞模型与实验动物 | 第43页 |
| ·试剂 | 第43页 |
| ·溶液 | 第43-44页 |
| 2 实验方法 | 第44-49页 |
| 3 结果与分析 | 第49-70页 |
| ·蛋卵磷脂的提取 | 第49页 |
| ·重组 ＨＤＬ－那西肽复合物的制备 | 第49-58页 |
| ·重组 ＨＤＬ 阿昔洛韦棕榈酸酯复合物的制备 | 第58-61页 |
| ·那西肽、阿昔洛韦棕榈酸酯及阿昔洛韦脂质体的制备 | 第61-63页 |
| ·药物的体外抗乙肝病毒作用试验 | 第63-68页 |
| ·体内靶向肝细胞的研究 | 第68-70页 |
| 4 讨论 | 第70-71页 |
| 小结 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-75页 |
| 结语 | 第75-76页 |
| 综述 肝炎病毒、抗病毒药物及肝靶向载药系统的研究进展 | 第76-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 附录 | 第111-112页 |
| 附图 | 第112-129页 |
