| 中文摘要 | 第1-4页 |
| 英文摘要 | 第4-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 文献回顾 | 第11-22页 |
| 一、IAP的性状及生物学活性 | 第13-14页 |
| 二、IAP的分离与纯化方法 | 第14-15页 |
| 三、IAP的来源及作用机理 | 第15-16页 |
| 四、IAP值测定方法 | 第16页 |
| 五、IAP的临床意义 | 第16-22页 |
| (一) IAP值开高对癌症病人的诊断意义 | 第16-17页 |
| (二) IAP值在肿瘤切除前后的变化 | 第17页 |
| (三) IAP值与肿瘤分期、分级的关系 | 第17页 |
| (四) IAP值与PPD反应的关系 | 第17-18页 |
| (五) IAP值与预后的关系 | 第18页 |
| (六) IAP值与其它肿瘤标记物的关系 | 第18-22页 |
| 实验内容 | 第22-92页 |
| 第一部分：IAP在膀胱肿瘤患者组织中表达、分布及其意义 | 第22-46页 |
| 一、材料与方法 | 第22-28页 |
| (一) 临床资料 | 第22页 |
| (二) 单抗MI_1及MI_2的制备概况 | 第22-27页 |
| (三) 主要试剂和仪器 | 第27页 |
| (四) 病理切片制备 | 第27-28页 |
| (五) 染色步骤 | 第28页 |
| (六) 阳性程度判断标准 | 第28页 |
| (七) 统计学处理 | 第28页 |
| 二、结果 | 第28-32页 |
| 三、讨论 | 第32-46页 |
| 第二部分：IAP在BBN诱癌小鼠膀胱组织中表达的动态观察 | 第46-92页 |
| 一、小鼠膀胱动物模型建立、抗癌治疗及其全过程形态学变化 | 第46-79页 |
| (一) 材料和方法 | 第46-48页 |
| 1.动物 | 第46页 |
| 2.主要药品 | 第46页 |
| 3.分组 | 第46-47页 |
| 4.标本制备 | 第47-48页 |
| 5.方法 | 第48页 |
| (二) 结果 | 第48-79页 |
| 二、单抗MI_1的长臂生物素化 | 第79-80页 |
| (一) 材料和方法 | 第79页 |
| 1.主要试剂及仪器 | 第79页 |
| 2.步骤 | 第79页 |
| (二) 结果 | 第79-80页 |
| 三、小鼠膀胱癌组织单抗MI_2免疫组化染色 | 第80-89页 |
| (一) 材料和方法 | 第80页 |
| 1.主要试剂及仪器 | 第80页 |
| 2.染色步骤 | 第80页 |
| (二) 结果 | 第80-89页 |
| 四.讨论 | 第89-92页 |
| 结论 | 第92-93页 |
| 文中常用英文缩写词及关键词 | 第93-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-110页 |
