| 提要 | 第1-10页 |
| 英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-45页 |
| 第1章 实验性糖尿病动物模型的制备方法 | 第12-21页 |
| 1 诱发性糖尿病动物模型 | 第12-18页 |
| ·胰腺切除致DM 动物模型 | 第12-13页 |
| ·化学试剂诱发DM 动物模型 | 第13-17页 |
| ·四氧嘧啶（Alloxan） | 第13-14页 |
| ·链脲佐菌素（streptozocin，STZ） | 第14-16页 |
| ·Alloxan-STZ 联合给药 | 第16页 |
| ·肾上腺素（AD） | 第16-17页 |
| ·环丙庚哌（cyrpohep tadine） | 第17页 |
| ·胰岛素拮抗因子 | 第17页 |
| ·水合阿脲（alloxan monohydrate） | 第17页 |
| ·催肥诱发糖尿病动物模型 | 第17页 |
| ·特殊膳食诱发糖尿病动物模型 | 第17-18页 |
| ·病毒诱发糖尿病动物模型 | 第18页 |
| 2 自发性遗传性糖尿病模型 | 第18-19页 |
| ·人类1 型糖尿病模型 | 第18-19页 |
| ·人类2 型糖尿病模型 | 第19页 |
| 3 转基因糖尿病动物模型（transgenic diabetes model） | 第19-21页 |
| 第2章 DPN 的可能发病机制 | 第21-28页 |
| 1 代谢学说 | 第21-25页 |
| ·多元醇途径（polyol pathway，PP）的激活 | 第22-23页 |
| ·糖基化终末产物（advanced glycation endproducts，AGEs）的形成 | 第23-24页 |
| ·蛋白激酶C（protein kinase C，PKC）途径的激活 | 第24-25页 |
| ·氨基己糖途径（hexosamine pathway）的激活 | 第25页 |
| 2 血管学说 | 第25-28页 |
| 参考文献 | 第28-45页 |
| 第二部分 实验性糖尿病性周围神经病发病机制及保护的研究 | 第45-126页 |
| 前言 | 第45-46页 |
| 第1章 材料与方法 | 第46-53页 |
| 1 主要实验仪器及试剂 | 第46-47页 |
| ·实验仪器 | 第46页 |
| ·实验试剂 | 第46-47页 |
| 2 动物模型制备及分组 | 第47-49页 |
| ·实验动物的选择 | 第47-48页 |
| ·实验性糖尿病性周围神经病大鼠模型的制备 | 第48页 |
| ·实验性糖尿病大鼠模型制备方法 | 第48页 |
| ·实验性糖尿病性周围神经病的成模标准 | 第48页 |
| ·实验动物分组及给药方法 | 第48页 |
| ·实验动物分组 | 第48页 |
| ·给药方法 | 第48页 |
| ·饲养条件和方法 | 第48-49页 |
| 3 DPN 大鼠坐骨神经传导速度的测定方法 | 第49页 |
| ·运动神经传导速度（Motor nerve conduction velocity，MNCV）测定 | 第49页 |
| ·感觉神经传导速度（Sensory nerve conduction velocity，SNCV）测定 | 第49页 |
| 4 DPN 大鼠下肢微循环血流量的测定方法 | 第49页 |
| 5 组织病理学研究方法 | 第49-51页 |
| ·留取标本的方法 | 第49-50页 |
| ·石蜡切片苏木素一伊红染色（HE 染色）方法 | 第50-51页 |
| ·透射电子显微镜标本的制作方法 | 第51页 |
| 6 免疫组织化学染色方法 | 第51-52页 |
| ·标本制备 | 第51-52页 |
| ·免疫组化SP 法的主要操作步骤 | 第52页 |
| ·结果判定标准 | 第52页 |
| ·图像分析分析方法 | 第52页 |
| 7 统计学方法 | 第52-53页 |
| 第2章 结果 | 第53-87页 |
| 1 大鼠体重及血糖变化结果 | 第53-54页 |
| ·各组大鼠体重的动态变化 | 第53页 |
| ·各组大鼠空腹血糖的动态变化 | 第53-54页 |
| 2 各组大鼠坐骨神经电生理检查结果 | 第54-58页 |
| ·各组大鼠坐骨神经MNCV 和CMAP 的动态变化 | 第54-56页 |
| ·MNCV 的动态变化结果 | 第54-55页 |
| ·CMAP 的动态变化结果 | 第55-56页 |
| ·各组大鼠坐骨神经SNCV 和SNAP 的动态变化 | 第56-58页 |
| ·SNCV 的动态变化结果 | 第56-57页 |
| ·SNAP 的动态变化结果 | 第57-58页 |
| 3 各组大鼠下肢微循环血流量的检测结果 | 第58-59页 |
| 4 各组大鼠坐骨神经及神经内膜毛细血管的组织病理学的检测结果 | 第59-60页 |
| ·HE 染色结果 | 第59-60页 |
| ·NC 组 | 第59页 |
| ·DM 组 | 第59-60页 |
| ·干预组 | 第60页 |
| ·透射电子显微镜观察结果 | 第60页 |
| ·NC 组 | 第60页 |
| ·DM 组 | 第60页 |
| ·干预组 | 第60页 |
| 5 各组大鼠坐骨神经氧化应激相关因子的检测结果 | 第60-76页 |
| ·各组大鼠坐骨神经VEGF 的动态表达结果 | 第60-62页 |
| ·VEGF 在轴索中的表达结果 | 第60-61页 |
| ·VEGF 在髓鞘中的表达结果 | 第61-62页 |
| ·各组大鼠坐骨神经TNF-α的动态表达结果 | 第62-64页 |
| ·TNF-α在轴索中的表达结果 | 第62页 |
| ·TNF-α在髓鞘中的表达结果 | 第62-64页 |
| ·各组大鼠坐骨神经IL-1 的动态表达结果 | 第64-66页 |
| ·IL-1 在轴索中的表达结果 | 第64页 |
| ·IL-1 在髓鞘中的表达结果 | 第64-66页 |
| ·各组大鼠坐骨神经IL-6 的动态表达结果 | 第66-68页 |
| ·IL-6 在轴索中的表达结果 | 第66页 |
| ·IL-6 在髓鞘中的表达结果 | 第66-68页 |
| ·各组大鼠坐骨神经NF-κB 的动态表达结果 | 第68-69页 |
| ·NF-κB 在轴索中的表达结果 | 第68页 |
| ·NF–κB 在髓鞘中的表达 | 第68-69页 |
| ·各组大鼠坐骨神经p38MAPK 的动态表达结果 | 第69-71页 |
| ·p38MAPK 在轴索中的表达结果 | 第69页 |
| ·p38MAPK 在髓鞘中的表达结果 | 第69-71页 |
| ·各组大鼠坐骨神经Caspase-3 的动态表达结果 | 第71-72页 |
| ·Caspase-3 在轴索中的表达结果 | 第71页 |
| ·Caspase-3 在髓鞘中的表达结果 | 第71-72页 |
| ·各组大鼠坐骨神经Bax 的动态表达结果 | 第72-74页 |
| ·Bax 在轴索中的表达结果 | 第72-73页 |
| ·Bax 在髓鞘中的表达 | 第73-74页 |
| ·各组大鼠坐骨神经Bcl-2 的动态表达结果 | 第74-76页 |
| ·Bcl-2 在轴索中的表达结果 | 第74页 |
| ·Bcl-2 在髓鞘中的表达结果 | 第74-76页 |
| 6 坐骨神经ET/NO 系统相关因子的检测结果 | 第76-87页 |
| ·各组大鼠坐骨神经eNOS 的动态表达结果 | 第76-78页 |
| ·eNOS 在轴索中的表达结果 | 第76页 |
| ·eNOS 在髓鞘中的表达结果 | 第76-78页 |
| ·各组大鼠坐骨神经iNOS 的动态表达结果 | 第78-79页 |
| ·iNOS 在轴索中的表达结果 | 第78页 |
| ·NOS 在髓鞘中的表达结果 | 第78-79页 |
| ·大鼠坐骨神经nNOS 的动态表达结果 | 第79-81页 |
| ·nNOS 在轴索中的表达结果 | 第79-80页 |
| ·nNOS 在髓鞘中的表达结果 | 第80-81页 |
| ·各组大鼠坐骨神经ET-1 的动态表达结果 | 第81-83页 |
| ·ET-1 在轴索中的表达结果 | 第81-82页 |
| ·ET-1 在髓鞘中的表达结果 | 第82-83页 |
| ·各组大鼠坐骨神经ETA 受体的动态表达结果 | 第83-85页 |
| ·ETA 受体在轴索中的表达结果 | 第83页 |
| ·ETA 受体在髓鞘中的表达结果 | 第83-85页 |
| ·各组大鼠坐骨神经ETB 受体的动态表达结果 | 第85-87页 |
| ·ETB 受体在轴索中的表达结果 | 第85页 |
| ·ETB 受体在髓鞘中的表达结果 | 第85-87页 |
| 第3章 讨论 | 第87-107页 |
| 1 DPN 模型的建立 | 第87-89页 |
| 2 DPN 大鼠坐骨神经电生理检查的动态变化特点 | 第89-91页 |
| 3 DPN 大鼠下肢微循环血流量的动态变化特点 | 第91页 |
| 4 DPN 大鼠坐骨神经组织病理学动态改变的特征 | 第91-92页 |
| 5 氧化应激相关因子与DPN 的相关性分析 | 第92-101页 |
| ·血管内皮生长因子与DPN | 第93-94页 |
| ·细胞因子与DPN | 第94-97页 |
| ·肿瘤坏死因子-α（Tumor necrosis factor-α，TNF-α）与DPN | 第94-95页 |
| ·白细胞介素-1（interleukin-1，IL-1）与DPN | 第95-96页 |
| ·白细胞介素-6（interleukin-6，IL-6）与DPN | 第96-97页 |
| ·信号传导通路（NF-κB 通路和p38MARK 通路）与DPN | 第97-99页 |
| ·NF-κB 通路与DPN | 第97-99页 |
| ·p38MAPK 通路与DPN | 第99页 |
| ·凋亡相关因子与DPN | 第99-101页 |
| ·Caspase-3 与DPN | 第100页 |
| ·Bax、Bcl-2 与DPN | 第100-101页 |
| 6 ET/NO 系统与DPN 的相关性 | 第101-105页 |
| ·NOS 与DPN | 第101-102页 |
| ·eNOS 在DPN 大鼠坐骨神经的动态表达特点 | 第101-102页 |
| ·iNOS 在DPN 大鼠坐骨神经的动态表达特点 | 第102页 |
| ·nNOS 在DPN 大鼠坐骨神经的动态表达特点 | 第102页 |
| ·ET-1 及其受体与DPN | 第102-103页 |
| ·ET-1 在DPN 大鼠坐骨神经的动态表达特点 | 第102-103页 |
| ·ETA 受体在DPN 大鼠坐骨神经的动态表达特点 | 第103页 |
| ·ETB 受体在DPN 大鼠坐骨神经的动态表达特点 | 第103页 |
| ·ET/NO 系统与DPN 大鼠微血管病变的相关性 | 第103-105页 |
| 7 本研究的特色与创新 | 第105页 |
| 8 展望 | 第105-107页 |
| 第4章 结论 | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-126页 |
| 附图 | 第126-159页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文和科研成果 | 第159-162页 |
| 致谢 | 第162-163页 |
| 中文摘要 | 第163-166页 |
| Abstract | 第166-169页 |
