| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-25页 |
| 1 量子点的基本特性 | 第12-13页 |
| 2 量子点的制备方法 | 第13-18页 |
| ·有机体系中合成量子点 | 第14-16页 |
| ·水相法合成量子点 | 第16-17页 |
| ·生物合成方法 | 第17-18页 |
| 3 表面修饰 | 第18页 |
| 4 量子点在分析科学中的研究进展 | 第18-23页 |
| ·量子点在无机离子和小分子测定中的应用 | 第19-20页 |
| ·量子点在生物大分子测定中的应用 | 第20-22页 |
| ·量子点在免疫分析中的应用 | 第22-23页 |
| 5 问题与展望 | 第23-24页 |
| 6 本论文的研究意义和创新点 | 第24-25页 |
| 第二章 基于量子点-羊抗小鼠二抗偶联物的荧光免疫分析方法的建立 | 第25-33页 |
| 1 前言 | 第25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-28页 |
| ·实验材料 | 第25-26页 |
| ·试剂 | 第25-26页 |
| ·仪器 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-28页 |
| ·基于量子点cFLISA方法和常规ELISA法的步骤 | 第26-27页 |
| ·抗原和抗体浓度的优化 | 第27页 |
| ·QDs-Ab_2浓度的优化 | 第27页 |
| ·加标回收率和精密度 | 第27页 |
| ·实际水样的检测 | 第27-28页 |
| 3 结果与讨论 | 第28-32页 |
| ·cFLISA方法灵敏度条件的优化 | 第28-29页 |
| ·一抗和包被抗原浓度的优化 | 第28页 |
| ·量子点-二抗溶液浓度的优化 | 第28-29页 |
| ·cFLISA方法学的评价 | 第29-31页 |
| ·灵敏度 | 第29-30页 |
| ·特异性 | 第30-31页 |
| ·精密度和准确性 | 第31页 |
| ·实际水样的检测 | 第31-32页 |
| 4 结论 | 第32-33页 |
| 第三章 量子点-链霉亲和素偶联物的制备及其在毒死蜱残留检测中的应用 | 第33-49页 |
| 1 前言 | 第33页 |
| 2 材料与方法 | 第33-39页 |
| ·材料 | 第33-34页 |
| ·主要试剂 | 第33-34页 |
| ·主要仪器设备 | 第34页 |
| ·方法 | 第34-39页 |
| ·水相法合成水溶性CdTe量子点 | 第34-35页 |
| ·量子点光谱性质的鉴定 | 第35页 |
| ·QDs-SA偶联物的制备及纯化 | 第35页 |
| ·制备生物素化一抗(Biotinylated-Ab_1) | 第35-36页 |
| ·QDs-SA-cFLISA方法 | 第36-37页 |
| ·传统ELISA步骤 | 第37页 |
| ·交叉反应率(CR) | 第37页 |
| ·生物素化一抗和包被抗原浓度的优化 | 第37页 |
| ·QDs/SA的合适摩尔比 | 第37页 |
| ·QDs和SA偶联反应中的最佳pH值 | 第37页 |
| ·QDs-SA偶联物最佳的稀释比例 | 第37-38页 |
| ·HPLC方法 | 第38页 |
| ·加标回收 | 第38页 |
| ·饮用水实际样品的检测 | 第38-39页 |
| 3 结果与讨论 | 第39-48页 |
| ·量子点的荧光性质 | 第39-40页 |
| ·QDs-SA-cFLISA方法的优化 | 第40-44页 |
| ·最佳的生物素化一抗和包被抗原 | 第40-42页 |
| ·QDs/SA的偶联比 | 第42页 |
| ·QDs和SA偶联反应过程中pH的优化 | 第42-43页 |
| ·最佳的QDs-SA偶联物稀释比 | 第43-44页 |
| ·方法的灵敏度 | 第44-45页 |
| ·特异性 | 第45-46页 |
| ·准确度和精密度 | 第46页 |
| ·实际水样的检测 | 第46-47页 |
| ·传统ELISA和QDs-SA-cFLISA方法的比较 | 第47-48页 |
| 4 总结 | 第48-49页 |
| 第四章 基于小分子半抗原直接包被模式和量子点荧光探针的荧光免疫分析方法的建立 | 第49-69页 |
| 1 前言 | 第49-51页 |
| 2 实验材料和方法 | 第51-56页 |
| ·材料 | 第51页 |
| ·实验材料 | 第51页 |
| ·主要的仪器设备 | 第51页 |
| ·实验方法 | 第51-56页 |
| ·制备完全抗原偶联物(CAP-BSA) | 第51-52页 |
| ·合成amino-CAP | 第52页 |
| ·制备biotinylated mAb | 第52页 |
| ·基于QDs-SA偶联物和小分子直接包被方式的QDs-SA-Hap coatedcFLISA步骤 | 第52-53页 |
| ·传统ELISA方法 | 第53页 |
| ·竞争抑制免疫分析方法的建立 | 第53-54页 |
| ·GA浓度、小分子半抗原包被浓度和封闭液种类的优化 | 第54页 |
| ·优化biotinylated-mAb和QDs-SA偶联物的浓度 | 第54-55页 |
| ·交叉反应率(CR) | 第55页 |
| ·虾仁中氯霉素的提取和含量分析 | 第55页 |
| ·加标回收率和精密度分析 | 第55页 |
| ·高效液相色谱分析方法 | 第55-56页 |
| 3 结果与讨论 | 第56-67页 |
| ·CAP-BSA完全抗原的合成和amino-CAP的鉴定 | 第56-58页 |
| ·方法灵敏度的优化 | 第58-63页 |
| ·最佳的GA和包被抗原Hap的浓度 | 第58-60页 |
| ·最佳biotinylated mAb浓度和最优QDs-SA偶联物稀释比 | 第60-62页 |
| ·包被条件和封闭条件的优化 | 第62-63页 |
| ·方法的评估 | 第63-67页 |
| ·方法的灵敏度 | 第63-65页 |
| ·方法的特异性 | 第65-66页 |
| ·加标回收率和准确率 | 第66-67页 |
| ·实际样品的分析 | 第67页 |
| 4 结论 | 第67-69页 |
| 第五章 全文总结的展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77页 |
