| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩略词表 | 第13-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-35页 |
| 1.1 桑黄的研究进展 | 第15-19页 |
| 1.1.1 桑黄简介 | 第15-16页 |
| 1.1.2 桑黄的自然分布 | 第16页 |
| 1.1.3 桑黄所含化学成分 | 第16-17页 |
| 1.1.4 桑黄的药用价值 | 第17-19页 |
| 1.2 黄酮类化合物 | 第19-27页 |
| 1.2.1 黄酮类物质的研究概况 | 第19-20页 |
| 1.2.2 黄酮类化和物的定性检测方法 | 第20-21页 |
| 1.2.3 黄酮类化和物的定量测定方法 | 第21-22页 |
| 1.2.4 黄酮类化合物的药理价值 | 第22-26页 |
| 1.2.5 黄酮类化合物的提取分离 | 第26-27页 |
| 1.3 生物活性物质抗衰老作用的研究 | 第27-29页 |
| 1.3.1 动物衰老模型的建立方法 | 第28-29页 |
| 1.3.2 衰老现象的评价手段 | 第29页 |
| 1.4 生物活性物质降血糖作用的探究概况 | 第29-32页 |
| 1.4.1 糖尿病动物模型建立 | 第30-31页 |
| 1.4.2 糖尿病动物的病症表征 | 第31-32页 |
| 1.5 黄酮类化合物分离纯化的研究概况 | 第32-33页 |
| 1.6 本实验的研究目的和意义 | 第33-35页 |
| 第2章 桑黄黄酮的化学性质研究 | 第35-41页 |
| 2.1 引言 | 第35页 |
| 2.2 实验材料 | 第35-36页 |
| 2.2.1 菌种 | 第35页 |
| 2.2.2 仪器 | 第35-36页 |
| 2.2.3 试剂 | 第36页 |
| 2.3 实验方法 | 第36-37页 |
| 2.3.1 培养基 | 第36页 |
| 2.3.2 桑黄菌的培养 | 第36-37页 |
| 2.3.3 桑黄黄酮的提取和制备 | 第37页 |
| 2.3.4 紫外扫描 | 第37页 |
| 2.3.5 HCl-Mg粉反应 | 第37页 |
| 2.3.6 NaOH颜色反应 | 第37页 |
| 2.3.7 UV检测 | 第37页 |
| 2.4 结果与分析 | 第37-39页 |
| 2.4.1 桑黄黄酮的最大吸收峰值 | 第37-38页 |
| 2.4.2 桑黄发酵液和菌丝体的乙醇提取物 | 第38页 |
| 2.4.3 HCl-Mg反应 | 第38页 |
| 2.4.4 NaOH颜色反应 | 第38-39页 |
| 2.4.5 桑黄黄酮的UV验证及氨气熏蒸颜色变化反应 | 第39页 |
| 2.5 讨论 | 第39-41页 |
| 第3章 前体物质和代谢刺激物对桑黄合成黄酮产量和活性的发酵动力学研究 | 第41-59页 |
| 3.1 引言 | 第41-42页 |
| 3.2 试验材料 | 第42-43页 |
| 3.2.1 仪器 | 第42页 |
| 3.2.2 试剂 | 第42-43页 |
| 3.2.3 所用软件 | 第43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-46页 |
| 3.3.1 菌种 | 第43页 |
| 3.3.2 培养基 | 第43页 |
| 3.3.3 发酵条件 | 第43-44页 |
| 3.3.4 菌丝干重测定 | 第44页 |
| 3.3.5 发酵液中葡萄糖测定(DNS法) | 第44页 |
| 3.3.6 发酵液中桑黄黄酮含量测定(AL(NO_3)_3-NaNO_2法) | 第44页 |
| 3.3.7 动力学参数描述 | 第44-46页 |
| 3.4 实验结果和数据分析 | 第46-57页 |
| 3.4.1 培养基中肉桂酸浓度的确定 | 第46页 |
| 3.4.2 培养基中萘乙酸(NAA)浓度的确定 | 第46-47页 |
| 3.4.3 肉桂酸对桑黄黄酮液体发酵动力学影响 | 第47-54页 |
| 3.4.4 萘乙酸(NAA)对桑黄黄酮液体发酵动力学影响 | 第54-55页 |
| 3.4.5 对照组(基本培养基组) | 第55-57页 |
| 3.5 讨论 | 第57-59页 |
| 第4章 桑黄黄酮液体发酵体系的建立 | 第59-79页 |
| 4.1 引言 | 第59页 |
| 4.2 实验材料 | 第59-61页 |
| 4.2.1 菌种 | 第59-60页 |
| 4.2.2 仪器 | 第60页 |
| 4.2.3 试剂 | 第60-61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-64页 |
| 4.3.1 培养基 | 第61页 |
| 4.3.2 发酵条件 | 第61页 |
| 4.3.3 参数测定 | 第61-62页 |
| 4.3.4 模型建立与数据分析 | 第62-64页 |
| 4.4 实验结果与分析 | 第64-76页 |
| 4.4.1 碳、氮源对桑黄发酵过程中菌丝量和黄酮的影响 | 第64-66页 |
| 4.4.2 无机盐对桑黄发酵过程中菌丝体干重和活性黄酮产量的影响 | 第66-67页 |
| 4.4.3 次级代谢产物刺激物对桑黄黄酮产量以及活性的影响 | 第67页 |
| 4.4.4 影响桑黄液体发酵黄酮合成主要因子的筛选(PB实验) | 第67-70页 |
| 4.4.5 最陡爬坡实验 | 第70-71页 |
| 4.4.6 响应面实验 | 第71-76页 |
| 4.5 讨论 | 第76-79页 |
| 第5章 桑黄液体发酵所得黄酮抗衰老作用的研究 | 第79-91页 |
| 5.1 引言 | 第79-80页 |
| 5.2 实验材料 | 第80-81页 |
| 5.2.1 供试小鼠 | 第80页 |
| 5.2.2 仪器 | 第80-81页 |
| 5.2.3 试剂 | 第81页 |
| 5.3 实验方法 | 第81-85页 |
| 5.3.1 桑黄黄酮粗品的制备 | 第81页 |
| 5.3.2 小鼠饲养 | 第81页 |
| 5.3.3 实验小鼠衰老模型的建立以及试验分组给药 | 第81-82页 |
| 5.3.4 试验小鼠血样本的采集 | 第82页 |
| 5.3.5 生理生化指标的测定 | 第82-83页 |
| 5.3.6 肝组织石蜡切片的制作及HE染色 | 第83-85页 |
| 5.4 结果与分析 | 第85-88页 |
| 5.4.1 小鼠衰老模型建立 | 第85页 |
| 5.4.2 饲喂桑黄黄酮对实验小鼠体重的影响 | 第85页 |
| 5.4.3 桑黄黄酮对实验小鼠生理生化指标的影响 | 第85-88页 |
| 5.4.4 桑黄黄酮对不同实验组小鼠肝组织病理形态的影响 | 第88页 |
| 5.5 讨论 | 第88-91页 |
| 第6章 桑黄黄酮降血糖作用的研究 | 第91-97页 |
| 6.1 引言 | 第91-92页 |
| 6.2 实验材料 | 第92-93页 |
| 6.2.1 供试小鼠 | 第92页 |
| 6.2.2 仪器 | 第92页 |
| 6.2.3 试剂 | 第92-93页 |
| 6.3 实验方法 | 第93-94页 |
| 6.3.1 桑黄黄酮粗品制备 | 第93页 |
| 6.3.2 小鼠饲养 | 第93页 |
| 6.3.3 小鼠糖尿病模型的建立 | 第93页 |
| 6.3.4 建模成功小鼠的分组及给药方案 | 第93页 |
| 6.3.5 供试小鼠血糖测定 | 第93-94页 |
| 6.4 结果与分析 | 第94-96页 |
| 6.4.1 小鼠糖尿病模型建立 | 第94页 |
| 6.4.2 不同剂量桑黄黄酮对糖尿病小鼠血糖的影响 | 第94-95页 |
| 6.4.3 不同剂量桑黄黄酮对糖尿病小鼠体重的影响 | 第95-96页 |
| 6.5 讨论 | 第96-97页 |
| 第7章 液体发酵所得桑黄黄酮的提取和初步分离纯化 | 第97-105页 |
| 7.1 引言 | 第97-98页 |
| 7.2 实验材料 | 第98页 |
| 7.2.1 仪器 | 第98页 |
| 7.2.2 Plymer | 第98页 |
| 7.2.3 试剂 | 第98页 |
| 7.3 实验方法 | 第98-100页 |
| 7.3.1 Plymer的处理 | 第98-99页 |
| 7.3.2 桑黄黄酮合成培养基的配制 | 第99页 |
| 7.3.3 发酵培养基中DuPont25树脂的加入 | 第99页 |
| 7.3.4 发酵液中DuPont25树脂的分离 | 第99页 |
| 7.3.5 DuPont25中富集的桑黄黄酮的洗脱 | 第99页 |
| 7.3.6 DuPont25树脂中洗脱的不同馏分的黄酮再经凝胶分离 | 第99-100页 |
| 7.4 结果与分析 | 第100-103页 |
| 7.4.1 不同型号的Plymer选择 | 第100-101页 |
| 7.4.2 培养基中DuPont25树脂的添加量的优化 | 第101页 |
| 7.4.3 DuPont25树脂中富集的桑黄黄酮的洗脱情况 | 第101-103页 |
| 7.5 讨论 | 第103-105页 |
| 第8章 结论 | 第105-107页 |
| 8.1 主要结论 | 第105-106页 |
| 8.2 工作展望 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-119页 |
| 致谢 | 第119-121页 |
| 攻读硕士学位期间科研成果 | 第121页 |
