| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-20页 |
| 研究现状、成果 | 第15-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-20页 |
| 一、miR-124在癫痫持续状态后调控SPHK1蛋白表达 | 第20-39页 |
| 1.1 对象和方法 | 第20-31页 |
| 1.1.1 实验动物与分组 | 第20页 |
| 1.1.2 主要试剂及仪器设备 | 第20-23页 |
| 1.1.3 癫痫动物模型建立 | 第23-24页 |
| 1.1.4 标本处理 | 第24页 |
| 1.1.5 应用qRT-PCR检测SE小鼠模型海马中miR-124的表达变化 | 第24-26页 |
| 1.1.6 应用qRT-PCR检测SE小鼠模型海马中SPHK1mRNA的表达变化 | 第26-27页 |
| 1.1.7 应用WesternBlotting检测SE小鼠模型的海马中SPHK1蛋白的表达变化 | 第27-30页 |
| 1.1.8 数据统计分析 | 第30-31页 |
| 1.2 结果 | 第31-35页 |
| 1.2.1 动物行为学观察 | 第31页 |
| 1.2.2 SE小鼠模型中miR-124的表达下调 | 第31-32页 |
| 1.2.3 SE小鼠模型SPHK1mRNA的表达 | 第32-33页 |
| 1.2.4 SE小鼠模型中SPHK1的蛋白表达 | 第33-34页 |
| 1.2.5 SE小鼠模型海中miR-124的表达与SPHK1蛋白表达呈正相关 | 第34-35页 |
| 1.3 讨论 | 第35-38页 |
| 1.3.1 miR-124在癫痫中的异常表达 | 第35-36页 |
| 1.3.2 SE小鼠模型中miR-124减少SPHK1的蛋白表达 | 第36-38页 |
| 1.4 小结 | 第38-39页 |
| 二、癫痫持续状态后Akt/NF-κB信号通路的研究 | 第39-53页 |
| 2.1 对象和方法 | 第39-46页 |
| 2.1.1 实验动物与分组 | 第39页 |
| 2.1.2 主要试剂及仪器设备 | 第39-42页 |
| 2.1.3 癫痫动物模型建立 | 第42页 |
| 2.1.4 标本处理 | 第42页 |
| 2.1.5 应用WesternBlotting检测SE小鼠模型海马中Akt/NF-κB信号通路蛋白的表达变化 | 第42-46页 |
| 2.1.6 数据统计分析 | 第46页 |
| 2.2 结果 | 第46-49页 |
| 2.2.1 动物行为学观察 | 第46-47页 |
| 2.2.2 SE后Akt/NF-κB信号通路磷酸化蛋白的表达变化 | 第47-48页 |
| 2.2.3 SE小鼠模型海中SPHK1的表达与p-Akt的表达呈负相关 | 第48-49页 |
| 2.3 讨论 | 第49-52页 |
| 2.4 小结 | 第52-53页 |
| 三、癫痫持续状态后海马神经元凋亡机制的研究 | 第53-62页 |
| 3.1 对象和方法 | 第53-55页 |
| 3.1.1 实验动物与分组 | 第53页 |
| 3.1.2 主要试剂及仪器设备 | 第53页 |
| 3.1.3 癫痫动物模型建立 | 第53-54页 |
| 3.1.4 标本处理 | 第54页 |
| 3.1.5 应用WesternBlotting检测SE小鼠模型海马中Akt参与的凋亡信号通路蛋白的表达变化 | 第54-55页 |
| 3.1.6 数据统计分析 | 第55页 |
| 3.2 结果 | 第55-58页 |
| 3.2.1 动物行为学观察 | 第55-56页 |
| 3.2.2 SE小鼠模型中Akt参与的凋亡信号通路代表信号分子活性的变化 | 第56-58页 |
| 3.3 讨论 | 第58-61页 |
| 3.4 小结 | 第61-62页 |
| 全文结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第73-74页 |
| 综述 | 第74-85页 |
| 综述参考文献 | 第79-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 个人简历 | 第86页 |
