| 摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-21页 |
| 1.1 研究背景与科学意义 | 第12-14页 |
| 1.1.1 红眼白水貂 | 第12-13页 |
| 1.1.2 水貂的养殖现状 | 第13-14页 |
| 1.2 QTL的检测方法 | 第14-15页 |
| 1.2.1 直接测序 | 第14页 |
| 1.2.2 PCR-SSCP技术 | 第14-15页 |
| 1.3 实时荧光定量PCR技术 | 第15-16页 |
| 1.4 候选基因概述 | 第16-20页 |
| 1.4.1 FSHβ基因 | 第16-18页 |
| 1.4.2 NCOA1基因 | 第18页 |
| 1.4.3 IGF-1基因 | 第18-20页 |
| 1.5 试验研究的目标和意义 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-30页 |
| 2.1 材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第21页 |
| 2.1.3 工具酶及试剂盒 | 第21页 |
| 2.1.4 药品与试剂 | 第21页 |
| 2.1.5 主要分子生物学软件及方法 | 第21-22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-30页 |
| 2.2.1 血液基因组提取 | 第22页 |
| 2.2.2 DNA浓度及OD260/280的检测 | 第22页 |
| 2.2.3 红眼白水貂FSHβ、NCOA1、IGF-1基因的引物设计 | 第22-25页 |
| 2.2.4 PCR-SSCP检测 | 第25-26页 |
| 2.2.5 统计模型的建立 | 第26-27页 |
| 2.2.6 实时荧光定量PCR | 第27-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-43页 |
| 3.1 全基因组和RNA提取 | 第30-31页 |
| 3.1.1 全基因组提取 | 第30页 |
| 3.1.2 RNA提取 | 第30-31页 |
| 3.2 FSHβ基因 | 第31-36页 |
| 3.2.1 PCR扩增结果 | 第31页 |
| 3.2.2 测序结果 | 第31页 |
| 3.2.3 红眼白水貂FSHβ基因多态性检测 | 第31-33页 |
| 3.2.4 FSHβ基因多态性与红眼白水貂生长性状的相关分析 | 第33-34页 |
| 3.2.5 红眼白水貂FSHβ基因实时荧光定量PCR结果 | 第34-36页 |
| 3.3 NCOA1基因 | 第36-40页 |
| 3.3.1 PCR扩增结果 | 第36页 |
| 3.3.2 测序结果 | 第36-37页 |
| 3.3.3 红眼白水貂NCOA1基因多态性检测 | 第37-38页 |
| 3.3.4 NCOA1基因多态性与红眼白水貂生长性状的相关分析 | 第38-39页 |
| 3.3.5 红眼白水貂NCOA1基因实时荧光定量结果 | 第39-40页 |
| 3.4 IGF-1基因 | 第40-42页 |
| 3.4.1 IGF-1基因的扩增结果 | 第40-41页 |
| 3.4.2 测序及比对 | 第41页 |
| 3.4.3 IGF-1多态位点的基因频率和基因型频率 | 第41页 |
| 3.4.4 IGF-1突变位点与生长性状的关联分析 | 第41-42页 |
| 3.5 NCOA1和FSHβ基因合并基因型对繁殖性能的影响 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-48页 |
| 4.1 生产相关基因相关性分析 | 第43-44页 |
| 4.1.1 FSHβ和NCOA1基因的多态性分析 | 第43页 |
| 4.1.2 IGF-1基因多态性分析 | 第43-44页 |
| 4.2 生产性状的相关型分析 | 第44-45页 |
| 4.2.1 FSHβ和NCOA1基因与繁殖性状的关系 | 第44-45页 |
| 4.2.2 IGF-1基因多态性与生长性状的关系 | 第45页 |
| 4.3 合并基因型效应 | 第45页 |
| 4.4 FSHβ和NCOA1基因在组织中的表达 | 第45-48页 |
| 4.4.1 FSHβ在不同时期各个组织中的表达 | 第45-46页 |
| 4.4.2 NCOA1基因在不同时期各个组织中的表达 | 第46-48页 |
| 5 结论 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第56页 |
