| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第13-18页 |
| 1.1 离子束介导小麦遗传转化研究 | 第13-14页 |
| 1.2 小麦变异材料农艺性状、面粉品质及光合特性研究 | 第14页 |
| 1.3 小麦变异材料耐盐性研究 | 第14-15页 |
| 1.4 小麦SRAP遗传标记分析 | 第15-17页 |
| 1.5 研究意义及主要内容 | 第17-18页 |
| 2 变异材料的农艺性状、面粉品质及光合特性分析 | 第18-25页 |
| 2.1 材料与方法 | 第18-20页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.2 测定指标及方法 | 第19-20页 |
| 2.2 结果与分析 | 第20-24页 |
| 2.2.1 小麦变异材料主要农艺性状的差异 | 第20-21页 |
| 2.2.2 变异材料面粉品质分析 | 第21-22页 |
| 2.2.3 变异材料光合特性分析 | 第22-24页 |
| 2.3 小结与讨论 | 第24-25页 |
| 3 盐胁迫对变异材料生理生化的影响 | 第25-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第25-29页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第25页 |
| 3.1.2 试验设计 | 第25页 |
| 3.1.3 变异材料生理生化指标分析 | 第25-29页 |
| 3.2 结果与分析 | 第29-39页 |
| 3.2.1 盐胁迫对小麦幼苗生长的影响 | 第29-31页 |
| 3.2.2 盐胁迫条件下小麦变异材料SOD活性分析 | 第31-32页 |
| 3.2.3 盐胁迫条件下小麦变异材料POD活性分析 | 第32-33页 |
| 3.2.4 盐胁迫条件下小麦变异材料CAT活性分析 | 第33-34页 |
| 3.2.5 盐胁迫条件下小麦变异材料还原型谷胱甘肽(GSH)含量分析 | 第34-35页 |
| 3.2.6 盐胁迫条件下小麦变异材料丙二醛(MDA)含量分析 | 第35-37页 |
| 3.2.7 盐胁迫条件下小麦变异材料可溶性蛋白含量分析 | 第37-38页 |
| 3.2.8 盐胁迫条件下小麦变异材料脯氨酸(Pro)含量分析 | 第38-39页 |
| 3.3 小结与讨论 | 第39-41页 |
| 4 变异材料的SRAP遗传多样性分析 | 第41-55页 |
| 4.1 材料与方法 | 第41-43页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第41页 |
| 4.1.2 SRAP引物 | 第41-42页 |
| 4.1.3 DNA提取 | 第42页 |
| 4.1.4 SRAP扩增 | 第42-43页 |
| 4.1.5 数据处理 | 第43页 |
| 4.2 结果与分析 | 第43-54页 |
| 4.2.1 20个小麦品种材料的SRAP遗传多样性分析 | 第43-48页 |
| 4.2.2 小麦变异材料的SRAP遗传多样性分析 | 第48-54页 |
| 4.3 小结与讨论 | 第54-55页 |
| 5 变异材料的SRAP变异机理研究 | 第55-63页 |
| 5.1 材料与方法 | 第55页 |
| 5.1.1 试验材料、SRAP扩增及数据处理 | 第55页 |
| 5.1.2 DNA测序 | 第55页 |
| 5.2 结果与分析 | 第55-61页 |
| 5.2.1 特异性DNA条带的回收测序和序列比对 | 第55-59页 |
| 5.2.2 延长引物并再次扩增、回收、测序及比对 | 第59-61页 |
| 5.2.3 两次测序结果对比 | 第61页 |
| 5.3 小结与讨论 | 第61-63页 |
| 6 结论与展望 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 个人简历及在学期间发表的学术论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
