| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-17页 |
| 1.1 生物医学成像技术 | 第11-12页 |
| 1.2 血管成像技术及其应用 | 第12-13页 |
| 1.3 本论文的选题依据和研究意义 | 第13-14页 |
| 1.4 本论文的研究方案和研究内容 | 第14-17页 |
| 第2章 SD-OCT系统与MPM系统研制及其优化 | 第17-27页 |
| 2.1 OCT概况、系统研制及其优化 | 第17-23页 |
| 2.1.1 OCT简介 | 第17页 |
| 2.1.2 SD-OCT系统研制 | 第17-20页 |
| 2.1.3 SD-OCT系统优化 | 第20-23页 |
| 2.2 MPM概况、系统研制及其优化 | 第23-26页 |
| 2.2.1 MPM简介 | 第23页 |
| 2.2.2 MPM系统研制 | 第23-24页 |
| 2.2.3 MPM系统优化 | 第24-26页 |
| 2.3 本章小结 | 第26-27页 |
| 第3章 生物医学成像造影剂 | 第27-40页 |
| 3.1 造影剂概况 | 第27页 |
| 3.2 OCT和MPM造影剂的作用机理 | 第27-30页 |
| 3.2.1 OCT造影剂的作用机理 | 第28-29页 |
| 3.2.2 MPM造影剂的作用机理 | 第29-30页 |
| 3.3 不同类型的造影剂及其应用 | 第30-34页 |
| 3.3.1 金属纳米材料 | 第30-32页 |
| 3.3.2 染料分子 | 第32页 |
| 3.3.3 半导体聚合物纳米粒子 | 第32-33页 |
| 3.3.4 其它相关材料 | 第33-34页 |
| 3.4 本实验所用造影剂的研制、表征及测试 | 第34-39页 |
| 3.4.1 PEG-GNRs的合成、表征及其毒性测试 | 第34-37页 |
| 3.4.1.1 PEG-GNRs的合成 | 第34-35页 |
| 3.4.1.2 PEG-GNRs的形貌表征和光谱测试 | 第35-36页 |
| 3.4.1.3 PEG-GNRs的生物毒性测试 | 第36-37页 |
| 3.4.2 SPNs的合成、表征及其毒性测试 | 第37-39页 |
| 3.4.2.1 SPNs的合成 | 第37-38页 |
| 3.4.2.2 SPNs的表征和生物毒性测试 | 第38-39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第4章 小鼠大脑皮层血管成像研究 | 第40-55页 |
| 4.1 小鼠大脑皮层血管OCT成像 | 第40-52页 |
| 4.1.1 生物模型和样品制备 | 第40-42页 |
| 4.1.1.1 小鼠大脑开颅模型构建 | 第40-41页 |
| 4.1.1.2 琼脂模型制备 | 第41页 |
| 4.1.1.3 细胞样片制备 | 第41-42页 |
| 4.1.2 PEG-GNRs造影增强的OCT血管成像 | 第42-46页 |
| 4.1.2.1 琼脂模型OCT成像 | 第42-43页 |
| 4.1.2.2 小鼠大脑皮层血管OCT成像 | 第43-46页 |
| 4.1.3 SPNs造影增强的OCT血管成像 | 第46-51页 |
| 4.1.3.1 Agar-TiO_2模型OCT成像 | 第46-48页 |
| 4.1.3.2 小鼠大脑皮层血管OCT成像 | 第48-51页 |
| 4.1.4 实验结果分析与讨论 | 第51-52页 |
| 4.2 小鼠大脑皮层血管MPM成像 | 第52-54页 |
| 4.2.1 PEG-GNRs溶液的MPM成像 | 第52-53页 |
| 4.2.2 HeLa细胞MPM成像 | 第53页 |
| 4.2.3 小鼠大脑皮层血管MPM成像 | 第53-54页 |
| 4.3 本章小结 | 第54-55页 |
| 第5章 裸鼠皮脊翼视窗肿瘤模型血管成像 | 第55-61页 |
| 5.1 裸鼠皮脊翼视窗肿瘤模型构建 | 第55-56页 |
| 5.2 裸鼠皮脊翼视窗肿瘤模型血管成像 | 第56-60页 |
| 5.2.1 OCT成像及其结果分析 | 第56-58页 |
| 5.2.2 MPM成像及其结果分析 | 第58-60页 |
| 5.3 本章小结 | 第60-61页 |
| 第6章 总结和展望 | 第61-63页 |
| 6.1 总结 | 第61页 |
| 6.2 展望 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第71-72页 |
