| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第14-29页 |
| 1.1 内源性大麻素系统 | 第14-18页 |
| 1.1.1 N-花生四烯酰乙醇胺(ananadamide,AEA) | 第15-16页 |
| 1.1.2 2-花生四烯酰甘油酯(2-arachidonoylglyerol,2-AG) | 第16-17页 |
| 1.1.3 油酰乙醇胺(N-Oleoylethanolamide,OEA) | 第17页 |
| 1.1.4 棕榈酰乙醇胺(N-Palmitoylethanolamide,PEA) | 第17-18页 |
| 1.2 大麻素受体 | 第18-20页 |
| 1.2.1 大麻素受体1(CB1) | 第18-19页 |
| 1.2.2 大麻素受体2(CB2) | 第19页 |
| 1.2.3 大麻素受体激动剂和拮抗剂 | 第19-20页 |
| 1.3 大麻素系统在无脊椎动物中的研究 | 第20-25页 |
| 1.3.1 无脊椎动物中的大麻素系统 | 第20-23页 |
| 1.3.2 无脊椎动物中内源性大麻素受体系统的进化 | 第23-25页 |
| 1.4 大麻素对无脊椎动物附着作用的研究 | 第25-26页 |
| 1.5 研究内容和意义 | 第26-29页 |
| 第二章 内源性大麻素对翡翠贻贝附着的影响及其机理的探索 | 第29-51页 |
| 2.1 材料和方法 | 第29-34页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第29页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第29-30页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第30-34页 |
| 2.2 结果 | 第34-47页 |
| 2.2.1 内源性大麻素对翡翠贻贝附着的影响 | 第34-39页 |
| 2.2.2 大麻素激动剂对翡翠贻贝附着的影响 | 第39-42页 |
| 2.2.3 大麻素拮抗剂对翡翠贻贝附着的影响 | 第42-45页 |
| 2.2.4 大麻素对翡翠贻贝附着蛋白表达的影响 | 第45-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-51页 |
| 第三章 翡翠贻贝中内源性大麻素的提取和含量测定 | 第51-66页 |
| 3.1 材料和方法 | 第51-56页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第51-52页 |
| 3.1.2 实验所需试剂 | 第52页 |
| 3.1.3 实验材料 | 第52-53页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第53-56页 |
| 3.2 结果 | 第56-63页 |
| 3.2.1 四种内源性大麻素在翡翠贻贝中含量的测定结果 | 第56-60页 |
| 3.2.2 花生四烯酸在不同组分翡翠贻贝中含量的测定结果 | 第60-63页 |
| 3.3 讨论 | 第63-66页 |
| 第四章 翡翠贻贝附着的转录组学研究 | 第66-85页 |
| 4.1 材料和方法 | 第66-70页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第66页 |
| 4.1.2 总RNA的提取 | 第66-67页 |
| 4.1.3 DGE建库和测序 | 第67-68页 |
| 4.1.4 序列比对、注释和差异基因获得 | 第68-69页 |
| 4.1.5 GO和KEGG富集分析 | 第69页 |
| 4.1.6 荧光定量PCR验证 | 第69-70页 |
| 4.2 结果 | 第70-81页 |
| 4.2.1 总RNA质量检测 | 第70-71页 |
| 4.2.2 测序质量评估 | 第71-72页 |
| 4.2.3 转录本拼接 | 第72页 |
| 4.2.4 基因功能注释 | 第72-77页 |
| 4.2.5 样品间RNA-seq相关性检查 | 第77-78页 |
| 4.2.6 基因差异表达分析 | 第78-80页 |
| 4.2.7 荧光定量PCR结果 | 第80-81页 |
| 4.3 讨论 | 第81-85页 |
| 第五章 论文主要结论和创新点 | 第85-87页 |
| 5.1 结论 | 第85-86页 |
| 5.2 本研究的创新点 | 第86页 |
| 5.3 展望 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
