中文摘要 | 第4-5页 |
abstract | 第5页 |
英文缩略词 | 第6-13页 |
第一章 绪论 | 第13-22页 |
1.1 吴茱萸碱 | 第13-15页 |
1.1.1 吴茱萸碱概况 | 第13页 |
1.1.2 吴茱萸碱的应用 | 第13-15页 |
1.2 阿尔茨海默症 | 第15-19页 |
1.2.1 神经退行性疾病 | 第15-16页 |
1.2.2 阿尔茨海默症概述 | 第16页 |
1.2.3 阿尔茨海默症发病机制 | 第16-19页 |
1.3 阿尔茨海默症研究进展 | 第19-21页 |
1.3.1 阿尔茨海默症发病现状 | 第19页 |
1.3.2 阿尔茨海默症常用动物模型 | 第19-20页 |
1.3.3 阿尔茨海默症治疗现状 | 第20-21页 |
1.4 选题背景及意义 | 第21-22页 |
第二章 吴茱萸碱对HT22细胞的安全性评价 | 第22-31页 |
2.1 引言 | 第22页 |
2.2 材料与仪器 | 第22-24页 |
2.2.1 细胞 | 第22页 |
2.2.2 仪器 | 第22-23页 |
2.2.3 试剂 | 第23-24页 |
2.3 实验方法 | 第24-26页 |
2.3.0 细胞培养 | 第24页 |
2.3.1 MTT实验 | 第24页 |
2.3.2 细胞凋亡实验 | 第24-25页 |
2.3.3 线粒体膜电位测定 | 第25页 |
2.3.4 细胞内ROS的含量测定 | 第25页 |
2.3.5 Westernblot | 第25页 |
2.3.6 统计学分析 | 第25-26页 |
2.4 结果与讨论 | 第26-29页 |
2.4.1 Evo对正常HT22细胞活力的影响 | 第26页 |
2.4.2 Evo对正常HT22细胞的细胞凋亡率的影响 | 第26-27页 |
2.4.3 Evo对正常HT22细胞的线粒体膜电位的影响 | 第27页 |
2.4.4 Evo对正常HT22细胞内ROS含量的影响 | 第27页 |
2.4.5 Evo对正常HT22细胞凋亡相关蛋白的影响 | 第27-28页 |
2.4.6 Evo对正常HT22细胞内Akt/mtor/GSK-3β信号通路蛋白影响 | 第28-29页 |
2.5 本章小结 | 第29-31页 |
第三章 吴茱萸碱对L-GLU诱导HT22细胞损伤的保护作用 | 第31-44页 |
3.1 引言 | 第31页 |
3.2 材料与仪器 | 第31-33页 |
3.2.1 细胞 | 第31页 |
3.2.2 仪器 | 第31-32页 |
3.2.3 试剂 | 第32-33页 |
3.3 实验方法 | 第33-36页 |
3.3.0 细胞培养 | 第33页 |
3.3.1 MTT实验 | 第33-34页 |
3.3.2 细胞凋亡实验 | 第34页 |
3.3.3 线粒体膜电位测定 | 第34-35页 |
3.3.4 细胞内ROS的含量测定 | 第35页 |
3.3.5 Westernblot | 第35页 |
3.3.6 统计学分析 | 第35-36页 |
3.4 结果与讨论 | 第36-42页 |
3.4.1 Evo对L-Glu诱导HT22细胞活力的影响 | 第36页 |
3.4.2 Evo对L-Glu诱导HT22细胞凋亡的影响 | 第36-37页 |
3.4.3 Evo对L-Glu诱导HT22细胞的细胞MMP的影响 | 第37-38页 |
3.4.4 Evo对L-Glu诱导HT22细胞内ROS含量的影响 | 第38-39页 |
3.4.5 Evo对L-Glu诱导的HT22细胞中细胞Bcl-2凋亡家族相关蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
3.4.6 Evo对L-Glu诱导的HT22细胞中Caspase家族凋亡蛋白影响 | 第40-41页 |
3.4.7 Evo对L-Glu诱导的HT22细胞中Akt/mtor/GSK-3β信号通路蛋白影响 | 第41-42页 |
3.5 本章小结 | 第42-44页 |
第四章 吴茱萸碱抗阿尔茨海默症的作用机制研究 | 第44-71页 |
4.1 引言 | 第44页 |
4.2 材料与仪器 | 第44-46页 |
4.2.1 仪器 | 第44-45页 |
4.2.2 试剂 | 第45-46页 |
4.2.3 实验动物 | 第46页 |
4.3 实验方法 | 第46-50页 |
4.3.1 动物模型建立及分组给药 | 第46-47页 |
4.3.2 行为学测试 | 第47-48页 |
4.3.3 Aβ42和Aβ40含量测定 | 第48页 |
4.3.4 中枢胆碱能相关指标测定 | 第48-49页 |
4.3.5 氧化应激相关指标测定 | 第49页 |
4.3.6 组织病理学检测 | 第49页 |
4.3.7 免疫组化实验 | 第49页 |
4.3.8 Westernblot | 第49-50页 |
4.3.9 统计学分析 | 第50页 |
4.4 结果与讨论 | 第50-68页 |
4.4.0 Evo对AD小鼠的体重的影响 | 第50页 |
4.4.1 Evo对AD小鼠行为学的影响 | 第50-53页 |
4.4.2 Evo对AD小鼠血清和脑皮质中Aβ42含量的影响 | 第53-54页 |
4.4.3 Evo对AD小鼠血清和脑皮质中Aβ40含量的影响 | 第54页 |
4.4.4 Evo对AD小鼠血清Ach浓度的影响 | 第54-55页 |
4.4.5 Evo对AD小鼠下丘脑Ach浓度的影响 | 第55-56页 |
4.4.6 Evo对AD小鼠脑皮质Ach浓度的影响 | 第56页 |
4.4.7 Evo对AD小鼠血清AchE浓度的影响 | 第56-57页 |
4.4.8 Evo对AD小鼠下丘脑AchE浓度的影响 | 第57-58页 |
4.4.9 Evo对AD小鼠脑皮质AchE浓度的影响 | 第58页 |
4.4.10 Evo对AD小鼠血清ChAT浓度的影响 | 第58-59页 |
4.4.11 Evo对AD小鼠下丘脑ChAT浓度的影响 | 第59-60页 |
4.4.12 Evo对AD小鼠脑皮质ChAT浓度的影响 | 第60页 |
4.4.13 Evo对AD小鼠血清ROS浓度的影响 | 第60-61页 |
4.4.14 Evo对AD小鼠下丘脑ROS浓度的影响 | 第61-62页 |
4.4.15 Evo对AD小鼠脑皮质ROS浓度的影响 | 第62页 |
4.4.16 Evo对AD小鼠血清SOD浓度的影响 | 第62-63页 |
4.4.17 Evo对AD小鼠下丘脑SOD浓度的影响 | 第63-64页 |
4.4.18 Evo对AD小鼠脑皮质SOD浓度的影响 | 第64页 |
4.4.19 Evo对AD小鼠血清GSH-Px浓度的影响 | 第64-65页 |
4.4.20 Evo对AD小鼠下丘脑GSH-Px浓度的影响 | 第65-66页 |
4.4.21 Evo对AD小鼠脑皮质GSH-Px浓度的影响 | 第66页 |
4.4.22 Evo对AD小鼠脑,脾和肾病理的影响 | 第66-67页 |
4.4.23 Evo对AD小鼠海马中Aβ老年斑的影响 | 第67页 |
4.4.24 Evo对AD小鼠脑中Akt/mtor/GSH-3β信号通路蛋白含量的影响 | 第67-68页 |
4.5 本章小结 | 第68-71页 |
第五章 结论 | 第71-73页 |
参考文献 | 第73-78页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第78-79页 |
致谢 | 第79页 |