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吴茱萸碱抗阿尔茨海默症活性及机制研究

中文摘要第4-5页
abstract第5页
英文缩略词第6-13页
第一章 绪论第13-22页
    1.1 吴茱萸碱第13-15页
        1.1.1 吴茱萸碱概况第13页
        1.1.2 吴茱萸碱的应用第13-15页
    1.2 阿尔茨海默症第15-19页
        1.2.1 神经退行性疾病第15-16页
        1.2.2 阿尔茨海默症概述第16页
        1.2.3 阿尔茨海默症发病机制第16-19页
    1.3 阿尔茨海默症研究进展第19-21页
        1.3.1 阿尔茨海默症发病现状第19页
        1.3.2 阿尔茨海默症常用动物模型第19-20页
        1.3.3 阿尔茨海默症治疗现状第20-21页
    1.4 选题背景及意义第21-22页
第二章 吴茱萸碱对HT22细胞的安全性评价第22-31页
    2.1 引言第22页
    2.2 材料与仪器第22-24页
        2.2.1 细胞第22页
        2.2.2 仪器第22-23页
        2.2.3 试剂第23-24页
    2.3 实验方法第24-26页
        2.3.0 细胞培养第24页
        2.3.1 MTT实验第24页
        2.3.2 细胞凋亡实验第24-25页
        2.3.3 线粒体膜电位测定第25页
        2.3.4 细胞内ROS的含量测定第25页
        2.3.5 Westernblot第25页
        2.3.6 统计学分析第25-26页
    2.4 结果与讨论第26-29页
        2.4.1 Evo对正常HT22细胞活力的影响第26页
        2.4.2 Evo对正常HT22细胞的细胞凋亡率的影响第26-27页
        2.4.3 Evo对正常HT22细胞的线粒体膜电位的影响第27页
        2.4.4 Evo对正常HT22细胞内ROS含量的影响第27页
        2.4.5 Evo对正常HT22细胞凋亡相关蛋白的影响第27-28页
        2.4.6 Evo对正常HT22细胞内Akt/mtor/GSK-3β信号通路蛋白影响第28-29页
    2.5 本章小结第29-31页
第三章 吴茱萸碱对L-GLU诱导HT22细胞损伤的保护作用第31-44页
    3.1 引言第31页
    3.2 材料与仪器第31-33页
        3.2.1 细胞第31页
        3.2.2 仪器第31-32页
        3.2.3 试剂第32-33页
    3.3 实验方法第33-36页
        3.3.0 细胞培养第33页
        3.3.1 MTT实验第33-34页
        3.3.2 细胞凋亡实验第34页
        3.3.3 线粒体膜电位测定第34-35页
        3.3.4 细胞内ROS的含量测定第35页
        3.3.5 Westernblot第35页
        3.3.6 统计学分析第35-36页
    3.4 结果与讨论第36-42页
        3.4.1 Evo对L-Glu诱导HT22细胞活力的影响第36页
        3.4.2 Evo对L-Glu诱导HT22细胞凋亡的影响第36-37页
        3.4.3 Evo对L-Glu诱导HT22细胞的细胞MMP的影响第37-38页
        3.4.4 Evo对L-Glu诱导HT22细胞内ROS含量的影响第38-39页
        3.4.5 Evo对L-Glu诱导的HT22细胞中细胞Bcl-2凋亡家族相关蛋白表达的影响第39-40页
        3.4.6 Evo对L-Glu诱导的HT22细胞中Caspase家族凋亡蛋白影响第40-41页
        3.4.7 Evo对L-Glu诱导的HT22细胞中Akt/mtor/GSK-3β信号通路蛋白影响第41-42页
    3.5 本章小结第42-44页
第四章 吴茱萸碱抗阿尔茨海默症的作用机制研究第44-71页
    4.1 引言第44页
    4.2 材料与仪器第44-46页
        4.2.1 仪器第44-45页
        4.2.2 试剂第45-46页
        4.2.3 实验动物第46页
    4.3 实验方法第46-50页
        4.3.1 动物模型建立及分组给药第46-47页
        4.3.2 行为学测试第47-48页
        4.3.3 Aβ42和Aβ40含量测定第48页
        4.3.4 中枢胆碱能相关指标测定第48-49页
        4.3.5 氧化应激相关指标测定第49页
        4.3.6 组织病理学检测第49页
        4.3.7 免疫组化实验第49页
        4.3.8 Westernblot第49-50页
        4.3.9 统计学分析第50页
    4.4 结果与讨论第50-68页
        4.4.0 Evo对AD小鼠的体重的影响第50页
        4.4.1 Evo对AD小鼠行为学的影响第50-53页
        4.4.2 Evo对AD小鼠血清和脑皮质中Aβ42含量的影响第53-54页
        4.4.3 Evo对AD小鼠血清和脑皮质中Aβ40含量的影响第54页
        4.4.4 Evo对AD小鼠血清Ach浓度的影响第54-55页
        4.4.5 Evo对AD小鼠下丘脑Ach浓度的影响第55-56页
        4.4.6 Evo对AD小鼠脑皮质Ach浓度的影响第56页
        4.4.7 Evo对AD小鼠血清AchE浓度的影响第56-57页
        4.4.8 Evo对AD小鼠下丘脑AchE浓度的影响第57-58页
        4.4.9 Evo对AD小鼠脑皮质AchE浓度的影响第58页
        4.4.10 Evo对AD小鼠血清ChAT浓度的影响第58-59页
        4.4.11 Evo对AD小鼠下丘脑ChAT浓度的影响第59-60页
        4.4.12 Evo对AD小鼠脑皮质ChAT浓度的影响第60页
        4.4.13 Evo对AD小鼠血清ROS浓度的影响第60-61页
        4.4.14 Evo对AD小鼠下丘脑ROS浓度的影响第61-62页
        4.4.15 Evo对AD小鼠脑皮质ROS浓度的影响第62页
        4.4.16 Evo对AD小鼠血清SOD浓度的影响第62-63页
        4.4.17 Evo对AD小鼠下丘脑SOD浓度的影响第63-64页
        4.4.18 Evo对AD小鼠脑皮质SOD浓度的影响第64页
        4.4.19 Evo对AD小鼠血清GSH-Px浓度的影响第64-65页
        4.4.20 Evo对AD小鼠下丘脑GSH-Px浓度的影响第65-66页
        4.4.21 Evo对AD小鼠脑皮质GSH-Px浓度的影响第66页
        4.4.22 Evo对AD小鼠脑,脾和肾病理的影响第66-67页
        4.4.23 Evo对AD小鼠海马中Aβ老年斑的影响第67页
        4.4.24 Evo对AD小鼠脑中Akt/mtor/GSH-3β信号通路蛋白含量的影响第67-68页
    4.5 本章小结第68-71页
第五章 结论第71-73页
参考文献第73-78页
作者简介及在学期间所取得的科研成果第78-79页
致谢第79页

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