芸薹素合成基因PSC1导入番茄的研究
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-9页 |
缩略词表 | 第9-10页 |
1 前言 | 第10-21页 |
·番茄转基因育种研究进展 | 第10-14页 |
·抗病转基因番茄 | 第10-11页 |
·抗病毒病 | 第11页 |
·抗真菌病 | 第11页 |
·抗细菌病 | 第11页 |
·抗虫转基因番茄 | 第11-12页 |
·转Bt毒蛋白基因 | 第11-12页 |
·转蛋白酶抑制基因 | 第12页 |
·转植物凝集素基因 | 第12页 |
·抗逆转基因番茄 | 第12-13页 |
·转抗冻基因 | 第12页 |
·转抗盐基因 | 第12-13页 |
·转抗重金属基因 | 第13页 |
·抗除草剂转基因番茄 | 第13页 |
·雄性不育和品质改良转基因番茄 | 第13-14页 |
·转引发雄性不育的基因 | 第13-14页 |
·转品质改良的基因 | 第14页 |
·获得转基因番茄的方法 | 第14-17页 |
·农杆菌介导法 | 第14-15页 |
·基因枪法 | 第15页 |
·花粉管通道法 | 第15页 |
·一种新的转基因方法-花序浸泡法 | 第15-17页 |
·花序浸泡法的原理和方法 | 第15-16页 |
·花序浸泡法的应用 | 第16-17页 |
·Silwet L-77在转化中的应用 | 第17页 |
·细胞分裂素在转化中的应用 | 第17页 |
·植物基因内含子对基因表达调控的影响 | 第17-18页 |
·芸薹素 | 第18-21页 |
·芸薹素在蔬菜上应用 | 第18-20页 |
·提高产量 | 第19页 |
·抗逆性增强 | 第19页 |
·解除药害 | 第19页 |
·提高品质 | 第19-20页 |
·芸薹素的生物合成途径及其突变体 | 第20-21页 |
·本课题的研究目的与意义 | 第21页 |
2 材料与方法 | 第21-29页 |
·材料与试剂 | 第21-23页 |
·植物材料 | 第21页 |
·酶与试剂 | 第21-22页 |
·菌株与质粒、载体 | 第22页 |
·主要溶液配制 | 第22-23页 |
·培养基 | 第23页 |
·实验方法 | 第23-29页 |
·番茄无菌苗获得 | 第23-24页 |
·番茄壮苗培养 | 第24-25页 |
·活化细菌 | 第25页 |
·摇菌时间对农杆菌生长的影响 | 第25页 |
·提取质粒DNA | 第25-26页 |
·菌落PCR鉴定转化子 | 第26页 |
·农杆菌的大量培养培养 | 第26页 |
·侵染转化 | 第26-27页 |
·转化菌液的制备 | 第26-27页 |
·侵染 | 第27页 |
·后期工作 | 第27页 |
·最佳筛选方法的探索 | 第27-28页 |
·育苗床上筛选 | 第27页 |
·培养基上筛选 | 第27页 |
·培养皿上筛选 | 第27-28页 |
·Kan溶解介质的影响 | 第28页 |
·最低Kan浓度的确定 | 第28页 |
·番茄总DNA提取 | 第28页 |
·抗性植株的PCR | 第28-29页 |
·琼脂糖凝胶电泳 | 第29页 |
3 结果与分析 | 第29-37页 |
·消毒液浸泡时间对番茄无菌苗出苗的影响 | 第29-30页 |
·目的片段的获得与载体构建 | 第30-31页 |
·摇菌时间对农杆菌生长的影响 | 第31页 |
·p14和p16在农杆菌中的检测 | 第31页 |
·番茄的侵染转化 | 第31页 |
·最佳筛选方法的研究 | 第31-34页 |
·育苗床上筛选 | 第31-32页 |
·培养基上筛选 | 第32页 |
·培养皿上筛选 | 第32-34页 |
·不同Kan浓度处理对番茄的影响 | 第34页 |
·Kan溶解介质的影响 | 第34-35页 |
·转基因番茄筛选 | 第35页 |
·抗性植株的PCR | 第35-36页 |
·转基因植株的纯和株系筛选 | 第36页 |
·转基因植株的形态 | 第36-37页 |
4 结论与讨论 | 第37-40页 |
·结论 | 第37页 |
·讨论 | 第37-40页 |
·转化菌液的PH值 | 第37页 |
·表面活性剂浓度对转化的影响 | 第37页 |
·细胞分裂素对转化的影响 | 第37-38页 |
·悬浮液的蔗糖浓度 | 第38页 |
·侵染时间的选定 | 第38页 |
·转化子的PCR检测 | 第38-39页 |
·最佳筛选方法的探索 | 第39页 |
·转基因植株的形态 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-45页 |
致谢 | 第45-46页 |
作者简历 | 第46页 |