| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 文献综述 | 第10-16页 |
| 1.1 酒精性脑损伤研究概述 | 第10-13页 |
| 1.1.1 酗酒危害 | 第10页 |
| 1.1.2 酒精性认知损伤研究进展 | 第10-11页 |
| 1.1.3 ERK信号通路在认知功能中的作用 | 第11-12页 |
| 1.1.4 神经递质在学习记忆中的作用 | 第12-13页 |
| 1.2 学习记忆相关活性肽研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2.1 内源性神经肽相关研究进展 | 第14页 |
| 1.2.2 外源性活性肽研究进展 | 第14页 |
| 1.3 本研究的目的意义及内容 | 第14-16页 |
| 1.3.1 研究目的及意义 | 第14-15页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第15-16页 |
| 2 酒精及NP-1干预对大鼠认知能力的影响 | 第16-23页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第16页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.1.2 实验材料与试剂 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-17页 |
| 2.2.1 动物分组 | 第16页 |
| 2.2.2 动物给药及摄入量测定 | 第16-17页 |
| 2.2.3 大鼠认知能力行为学评价 | 第17页 |
| 2.2.4 数据处理 | 第17页 |
| 2.3 结果与分析 | 第17-22页 |
| 2.3.1 酒精及NP-1干预对SD大鼠体重变化的影响 | 第17-18页 |
| 2.3.2 酒精及NP-1干预对SD大鼠酒精性认知能力的影响 | 第18-22页 |
| 2.4 讨论 | 第22页 |
| 2.5 本章小结 | 第22-23页 |
| 3 酒精及NP-1干预对大鼠海马CA1区组织结构及四种神经递质含量的影响 | 第23-31页 |
| 3.1 试剂与仪器 | 第23-24页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第23页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第23-24页 |
| 3.2 实验方法 | 第24-25页 |
| 3.2.1 大鼠酒精性脑损伤模型建立及NP-1干预 | 第24页 |
| 3.2.2 取材及固定 | 第24页 |
| 3.2.3 HE染色 | 第24页 |
| 3.2.4 标准溶液配置 | 第24页 |
| 3.2.5 脑组织处理 | 第24-25页 |
| 3.2.6 LC-MS/MS法检测四种神经递质 | 第25页 |
| 3.2.7 数据处理 | 第25页 |
| 3.3 结果与分析 | 第25-28页 |
| 3.3.1 酒精及NP-1干预对大鼠大脑海马组织CA1区神经元组织形态的影响 | 第25-26页 |
| 3.3.2 酒精及NP-1干预对四种神经递质含量的影响 | 第26-28页 |
| 3.4 讨论 | 第28-29页 |
| 3.5 本章小结 | 第29-31页 |
| 4 酒精及NP-1干预对ERK信号通路相关标记蛋白表达水平的影响 | 第31-42页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第31-32页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第31页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第31-32页 |
| 4.2 实验方法 | 第32-33页 |
| 4.2.1 大鼠酒精性脑损伤模型建立及NP-1干预 | 第32页 |
| 4.2.2 样品处理及总蛋白提取 | 第32页 |
| 4.2.3 SDS-PAGE胶制作 | 第32页 |
| 4.2.4 电泳 | 第32页 |
| 4.2.5 转膜 | 第32-33页 |
| 4.2.6 孵育 | 第33页 |
| 4.2.7 数据处理 | 第33页 |
| 4.3 结果与分析 | 第33-39页 |
| 4.3.1 酒精及NP-1干预对大鼠BDNF蛋白表达量的影响 | 第33-34页 |
| 4.3.2 酒精及NP-1干预对大鼠PSD95蛋白表达量的影响 | 第34-36页 |
| 4.3.3 酒精及NP-1干预对大鼠CREB蛋白表达量的影响 | 第36-38页 |
| 4.3.4 酒精及NP-1干预对大鼠ERK1/2蛋白表达量的影响 | 第38-39页 |
| 4.4 讨论 | 第39-40页 |
| 4.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 5 酒精及NP-1干预对大鼠突触结构可塑性标记蛋白mRNA转录水平的影响 | 第42-52页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第42-43页 |
| 5.1.1 实验试剂 | 第42页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第42-43页 |
| 5.2 实验方法 | 第43-45页 |
| 5.2.1 大鼠酒精性脑损伤模型及NP-1干预 | 第43页 |
| 5.2.2 RNA提取 | 第43页 |
| 5.2.3 引物设计 | 第43页 |
| 5.2.4 RNA质量和完整性检测 | 第43页 |
| 5.2.5 逆转录 | 第43-44页 |
| 5.2.6 RT-PCR实验 | 第44页 |
| 5.2.7 数据处理 | 第44-45页 |
| 5.3 结果与分析 | 第45-50页 |
| 5.3.1 NP-1对大鼠BDNFmRNA转录水平的影响 | 第45-46页 |
| 5.3.2 NP-1对大鼠PSD95mRNA转录水平的影响 | 第46-47页 |
| 5.3.3 NP-1对大鼠CREBmRNA转录水平的影响 | 第47-49页 |
| 5.3.4 NP-1对大鼠ERKmRNA转录水平的影响 | 第49-50页 |
| 5.4 讨论 | 第50-51页 |
| 5.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 6 结论与展望 | 第52-54页 |
| 6.1 结论 | 第52页 |
| 6.2 创新之处 | 第52页 |
| 6.3 不足与展望 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简介 | 第63-64页 |
| 导师简介 | 第64页 |
