| 中文摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 英汉缩略词对照表 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 1 材料与方法 | 第15-38页 |
| 1.1 主要实验材料 | 第15-19页 |
| 1.1.1 实验细胞来源 | 第15页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第15-18页 |
| 1.1.3 主要实验仪器与实验设备 | 第18-19页 |
| 1.2 主要实验方法 | 第19-38页 |
| 1.2.1 实验溶液配制 | 第19-21页 |
| 1.2.2 实验方法 | 第21-38页 |
| 1.2.2.1 细胞准备 | 第21页 |
| 1.2.2.2 细胞复苏、培养、传代、冻存 | 第21-25页 |
| 1.2.2.3 细胞计数及细胞种板 | 第25-26页 |
| 1.2.2.4 细胞增殖实验 | 第26-27页 |
| 1.2.2.5 平板克隆形成实验 | 第27-28页 |
| 1.2.2.6 细胞周期实验 | 第28页 |
| 1.2.2.7 细胞凋亡实验 | 第28-29页 |
| 1.2.2.8 Hoechst 33258实验 | 第29页 |
| 1.2.2.9 JC-1实验 | 第29-30页 |
| 1.2.2.10 ROS实验 | 第30页 |
| 1.2.2.11 Western Blotting | 第30-38页 |
| 1 )细胞总蛋白提取 | 第30页 |
| 2 )胞浆总蛋白的提取 | 第30-31页 |
| 3 )BCA法蛋白浓度的测定 | 第31-32页 |
| 4 )煮样 | 第32页 |
| 5 )SDS-PAGE电泳 | 第32-38页 |
| 1.3 统计学分析 | 第38页 |
| 2 结果 | 第38-48页 |
| 2.1 Rh(L)_2Cl_2抑制肝癌细胞株的增殖 | 第38-40页 |
| 2.2 Rh(L)_2Cl_2诱导HepG2的细胞周期阻滞在G1期 | 第40-42页 |
| 2.3 Rh(L)_2Cl_2引起HepG2细胞凋亡 | 第42页 |
| 2.4 Rh(L)_2Cl_2诱导HepG2细胞核固缩 | 第42-43页 |
| 2.5 Rh(L)_2Cl_2诱导HepG2细胞的线粒体外膜电势(△Ψm)降低 | 第43页 |
| 2.6 Rh(L)_2Cl_2诱导HepG2细胞凋亡的同时可以引起ROS的增加 | 第43-46页 |
| 2.7 Rh(L)_2Cl_2通过线粒体凋亡信号通路和死亡受体信号通路诱导HepG2细胞凋亡 | 第46-48页 |
| 3 讨论 | 第48-51页 |
| 4 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 附录 (综述) | 第56-71页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
