| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 英文缩写词表 | 第11-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-16页 |
| 第2章 文献综述 | 第16-20页 |
| 2.1 牙周炎中骨丧失的机制 | 第16-17页 |
| 2.1.1 成骨细胞和骨形成过程 | 第16-17页 |
| 2.1.2 破骨细胞和骨吸收过程 | 第17页 |
| 2.2 miRNA对成骨的调控作用 | 第17-18页 |
| 2.3 miRNA的转运 | 第18-20页 |
| 第3章 实验设备和材料 | 第20-22页 |
| 3.1 主要试剂与材料 | 第20页 |
| 3.2 主要仪器与设备 | 第20-22页 |
| 第4章 实验方法 | 第22-29页 |
| 4.1 载药生物膜的制备 | 第22-23页 |
| 4.2 实验动物培养及动物模型制备 | 第23-24页 |
| 4.3 CBCT扫描大鼠颅骨缺损区域 | 第24页 |
| 4.4 Micro-CT扫描颅骨缺损区域 | 第24页 |
| 4.5 HE染色 | 第24-26页 |
| 4.6 RT-PCR检测成骨相关因子Runx2、SP7、ColⅠmRNA表达量 | 第26-28页 |
| 4.7 统计学分析 | 第28-29页 |
| 第5章 实验结果 | 第29-34页 |
| 5.1 CBCT检测颅骨缺损区新骨形成情况 | 第29页 |
| 5.2 micro-CT检测颅骨缺损区新骨形成情况 | 第29-30页 |
| 5.3 HE染色显示缺损区新骨形成情况 | 第30-31页 |
| 5.4 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物上调成骨特异性因子Runx2、SP7、ColⅠ表达 | 第31-34页 |
| 第6章 讨论 | 第34-38页 |
| 6.1 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物的体内实验基础 | 第34-35页 |
| 6.2 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物促进缺损区新骨形成 | 第35-36页 |
| 6.3 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物促进缺损区成骨向分化 | 第36-38页 |
| 第7章 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-45页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第45-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
