摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
英文缩略词表 | 第13-14页 |
前言 | 第14-18页 |
第一部分 氧糖剥夺后处理对氧糖剥夺再灌注损伤的保护作用 | 第18-30页 |
1.1 前言 | 第18页 |
1.2 实验材料 | 第18-21页 |
1.2.1 细胞品系 | 第18-19页 |
1.2.2 实验主要试剂 | 第19页 |
1.2.3 实验主要仪器 | 第19-20页 |
1.2.4 实验用液的配制 | 第20-21页 |
1.3 实验内容与方法 | 第21-25页 |
1.3.1 SK-N-SH细胞株的培养方法 | 第21-24页 |
1.3.2 OGDP各组对细胞存活率的影响 | 第24-25页 |
1.3.4 统计学处理 | 第25页 |
1.4 实验结果 | 第25-27页 |
1.4.1 OGDP各组对细胞存活率的影响 | 第25-26页 |
1.4.2 细胞形态学观察 | 第26-27页 |
1.5 讨论 | 第27-30页 |
第二部分 HSP70在氧糖剥夺后处理中的表达和对凋亡细胞的影响 | 第30-39页 |
2.1 前言 | 第30-31页 |
2.2 实验材料 | 第31页 |
2.2.1 主要试剂 | 第31页 |
2.2.2 实验溶液的配制 | 第31页 |
2.3 实验内容与方法 | 第31-33页 |
2.3.1 SK-N-SH细胞的培养 | 第31页 |
2.3.2 SABC法检测各组HSP70的表达 | 第31-32页 |
2.3.3 AO/EB双染法检测各组细胞凋亡率 | 第32-33页 |
2.3.4 统计学方法 | 第33页 |
2.4 结果 | 第33-36页 |
2.4.1 SABC法检测各组HSP70的表达 | 第33-34页 |
2.4.2 AO/EB双染法检测各组细胞凋亡 | 第34-36页 |
2.5 讨论 | 第36-39页 |
第三部分 HSP70在氧糖剥夺后处理中抑制细胞凋亡的可能机制 | 第39-45页 |
3.1 前言 | 第39页 |
3.2 实验材料 | 第39-40页 |
3.2.1 主要试剂 | 第39-40页 |
3.2.2 实验溶液的配制 | 第40页 |
3.3 实验内容与方法 | 第40-41页 |
3.3.1 SK-N-SH细胞的培养 | 第40页 |
3.3.2 SABC法检测各组Bcl-2 的表达 | 第40-41页 |
3.3.3 统计学方法 | 第41页 |
3.4 结果 | 第41-43页 |
3.4.1 SABC法检测各组Bcl-2 的表达 | 第41-43页 |
3.5 讨论 | 第43-45页 |
结论 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-50页 |
文献综述 热休克蛋白70在脑缺血后处理中的研究进展 | 第50-64页 |
参考文献 | 第59-64页 |
致谢 | 第64-66页 |