| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 研究工作的背景与意义 | 第9-15页 |
| 1.1.1 抑郁症的研究进展 | 第9-11页 |
| 1.1.2 LPS诱导啮齿动物抑郁样行为 | 第11-12页 |
| 1.1.3 小胶质细胞的功能 | 第12-13页 |
| 1.1.4 瞬时性离子通道TRPV1与炎症的关系 | 第13-14页 |
| 1.1.5 炎症小体及其调节机制 | 第14-15页 |
| 1.2 实验假说与技术路线 | 第15-16页 |
| 第二章 瞬时性离子通道TRPV1在炎症环境下海马区的表达水平 | 第16-31页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第16-27页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第16-17页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第17页 |
| 2.1.3 试剂获取及配制 | 第17-18页 |
| 2.1.4 实时定量PCR | 第18-21页 |
| 2.1.5 免疫荧光染色 | 第21-22页 |
| 2.1.6 组织蛋白免疫印迹 | 第22-25页 |
| 2.1.7 原代小胶质细胞培养 | 第25-27页 |
| 2.1.8 数据处理方法 | 第27页 |
| 2.2 实验结果 | 第27-29页 |
| 2.2.1 LPS处理小鼠的海马区TRPV1的表达显著上升 | 第27-28页 |
| 2.2.2 LPS主要引起小胶质细胞上的TRPV1表达上升 | 第28-29页 |
| 2.3 讨论 | 第29-30页 |
| 2.4 本章小结 | 第30-31页 |
| 第三章 阻断TRPV1对LPS诱导的抑郁样行为的影响 | 第31-39页 |
| 3.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第31页 |
| 3.1.2 实验设备 | 第31页 |
| 3.1.3 试剂配置及获取 | 第31-32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.2.1 小鼠旷场实验 | 第32页 |
| 3.2.2 小鼠悬尾实验 | 第32页 |
| 3.2.3 小鼠强迫游泳实验 | 第32-33页 |
| 3.2.4 小鼠侧脑室注射 | 第33页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第33页 |
| 3.3 实验结果 | 第33-36页 |
| 3.3.1 TRPV1基因缺陷能减弱LPS诱导的抑郁样行为 | 第33-35页 |
| 3.3.2 CPZ阻断TRPV1功能会减弱LPS诱导的抑郁样行为 | 第35-36页 |
| 3.4 讨论 | 第36-38页 |
| 3.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第四章 TRPV1对神经炎症的影响 | 第39-51页 |
| 4.1 实验材料 | 第40页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第40页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 4.2.1 实时定量PCR | 第40页 |
| 4.2.2 原代小胶质细胞 | 第40页 |
| 4.2.3 小鼠侧脑室注射 | 第40-41页 |
| 4.2.4 WB及灰度值分析 | 第41页 |
| 4.2.5 统计分析 | 第41-42页 |
| 4.3 实验结果 | 第42-48页 |
| 4.3.1 阻断TRPV1并不影响海马区的NF-κB激活 | 第42-43页 |
| 4.3.2 阻断TRPV1影响了炎症小体的激活和IL-1β的释放 | 第43-47页 |
| 4.3.3 激活TRPV1能促进小胶质细胞炎症小体的激活 | 第47-48页 |
| 4.4 讨论 | 第48-50页 |
| 4.5 本章小结 | 第50-51页 |
| 第五章 全文总结与展望 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 攻读硕士学位期间取得的成果 | 第59页 |
