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基于Skp2为靶点的抗肿瘤多肽药物的筛选

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
第1章 绪论第11-16页
    1.1 研究背景第11页
    1.2 Skp2与肿瘤第11-16页
        1.2.1 Skp2结构与功能第11-14页
        1.2.2 小分子多肽第14-15页
        1.2.3 Skp2的多种底物第15-16页
第2章 主要方法和设计流程第16-35页
    2.1 引言第16页
    2.2 主要方法第16-31页
        2.2.1 酵母双杂交第16-17页
        2.2.2 分子克隆第17-18页
        2.2.3 Gel Extraction(OMEGA试剂盒)第18-19页
        2.2.4 转化第19-20页
        2.2.5 小分子多肽基因合成第20-21页
        2.2.6 反转录(TAKARA试剂盒)第21页
        2.2.7 Q-PCR第21-22页
        2.2.8 琼脂糖凝胶电泳第22-23页
        2.2.9 凝胶成像系统分析第23页
        2.2.10 Plasmid Isolation(OMEGA小提试剂盒)第23页
        2.2.11 Plasmid Isolation(TIANGEN大提试剂盒)第23-24页
        2.2.12 RNA提取(Trizol提取法)第24-25页
        2.2.13 Superfectin Transfection (普飞生物)第25页
        2.2.14 磷酸钙转染第25-26页
        2.2.15 PEI Transfection第26页
        2.2.16 Western Blot第26-28页
        2.2.17 超声破碎第28-29页
        2.2.18 NI-柱纯化第29页
        2.2.19透析第29页
        2.2.20 BCA蛋白定量第29-30页
        2.2.21 PI染色细胞周期第30页
        2.2.22 MTT细胞增殖实验第30-31页
        2.2.23 GST-pull down实验第31页
    2.3 试剂及设备第31-34页
        2.3.1 实验试剂第31-33页
        2.3.2 实验仪器设备第33-34页
    2.4 设计流程第34-35页
第3章 实验结果第35-55页
    3.1 引言第35页
    3.2 酵母双杂交第35-36页
    3.3 小分子多肽构建及纯化第36-40页
        3.3.1 多肽适配体及支架蛋白的原核表达载体的构建第36-39页
        3.3.2 多肽适配体的IPTG诱导表达及纯化第39-40页
    3.4 体外相互作用机制研究第40-42页
        3.4.1 GST标签及标签蛋白Skp2的构建及诱导表达第40-41页
        3.4.2 GST-pull down实验体外验证多肽和Skp2之间相互作用第41-42页
    3.5 肿瘤细胞系的筛选第42-46页
        3.5.1 肺癌细胞系Skp2和底物的mRNA和蛋白水平第42-44页
        3.5.2 胃癌、乳腺癌细胞系Skp2和底物的mRNA和蛋白水平第44-45页
        3.5.3 神经胶质瘤细胞系Skp2和底物的mRNA和蛋白水平第45-46页
        3.5.4 细胞系的确定第46页
    3.6 功能多肽的筛选第46-51页
        3.6.1 纯化蛋白浓度的测定第46-47页
        3.6.2 多肽适配体给药第47页
        3.6.3 A549细胞转染方法的确定第47-48页
        3.6.4 A549细胞系中转染多肽后Skp2底物蛋白变化第48-49页
        3.6.5 HeLa转染方法筛选第49-50页
        3.6.6 HeLa细胞系中梯度转染多肽后Skp2底物蛋白变化第50-51页
    3.7 功能验证第51-54页
        3.7.1 多肽适配体 6-1、8-1 和 23-5 对细胞周期的影响第51-53页
        3.7.2 多肽适配体 6-1、8-1 和 23-5 影响细胞增殖实验第53-54页
    3.8 结论第54-55页
第4章 讨论与展望第55-57页
致谢第57-58页
参考文献第58-61页
综述第61-70页
    参考文献第65-70页

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