| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第11-21页 |
| 1 性腺发育相关基因的研究进展 | 第11-16页 |
| 1.1 脊椎动物性腺发育相关基因 | 第12-14页 |
| 1.2 无脊椎动物性腺发育相关基因 | 第14-16页 |
| 2 PHB 家族基因的研究进展 | 第16-20页 |
| 2.1 PHB 家族基因的序列特征 | 第16-17页 |
| 2.2 PHB 家族成员的功能 | 第17-20页 |
| 3 本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 第二章 栉孔扇贝性腺发育相关基因的筛选 | 第21-29页 |
| 1 材料与方法 | 第21-26页 |
| 1.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第21-22页 |
| 1.1.2 工具酶、试剂盒及仪器 | 第22页 |
| 1.2 实验方法 | 第22-26页 |
| 1.2.1 总 RNA 的提取 | 第22-23页 |
| 1.2.2 雌雄性腺 cDNA 模板的合成 | 第23-24页 |
| 1.2.3 半定量 RT-PCR | 第24-26页 |
| 1.2.3.1 设计 RT-PCR 引物 | 第24-25页 |
| 1.2.3.2 雌雄性腺模板量的调平 | 第25页 |
| 1.2.3.3 RT-PCR 分析各基因在雌雄性腺中表达的差异 | 第25-26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-27页 |
| 2.1 总 RNA 的质量 | 第26-27页 |
| 2.2 栉孔扇贝增殖期精卵巢差异表达序列的检验 | 第27页 |
| 3 讨论 | 第27-29页 |
| 第三章 栉孔扇贝 phb2 基因 cDNA 全长的克隆及表达 | 第29-48页 |
| 1 材料与方法 | 第29-41页 |
| 1.1 实验材料 | 第29-30页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第29页 |
| 1.1.2 工具酶、试剂盒及仪器 | 第29-30页 |
| 1.2 实验方法 | 第30-41页 |
| 1.2.1 性腺组织学切片的制备和性腺分期 | 第30-31页 |
| 1.2.2 总 RNA 提取和 cDNA 模板的合成 | 第31页 |
| 1.2.3 目的基因的 RACE 扩增 | 第31-35页 |
| 1.2.3.1 引物设计 | 第31-32页 |
| 1.2.3.2 RACE-Ready cDNA 的合成 | 第32-33页 |
| 1.2.3.3 RACE 扩增及序列的生物信息学分析 | 第33-35页 |
| 1.2.3.3.1 5’-RACE 扩增 | 第33-35页 |
| 1.2.3.3.2 3’-RACE 扩增 | 第35页 |
| 1.2.4 目的基因的全长 cDNA 获得生物信息学分析 | 第35-36页 |
| 1.2.5 半定量 RT-PCR | 第36页 |
| 1.2.6 相对定量 qRT-PCR 分析 | 第36-37页 |
| 1.2.7 原位杂交 | 第37-41页 |
| 1.2.7.1 探针的的制备 | 第37-40页 |
| 1.2.7.2 组织原位杂交 | 第40-41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-46页 |
| 2.1 目的基因全长 cDNA 的克隆及其序列的生物信息学分析 | 第41-44页 |
| 2.2 栉孔扇贝 phb2 基因的时空表达特征 | 第44-46页 |
| 3 讨论 | 第46-48页 |
| 3.1 Cf-phb2 基因序列结构及同源性分析 | 第46页 |
| 3.2 Cf-phb2 基因的时空表达规律及其在精子发生中的作用 | 第46-47页 |
| 3.3 Cf-phb2 基因潜在的抑制细胞增殖的作用 | 第47-48页 |
| 总结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 个人简历 | 第57-58页 |
| 待发表论文 | 第58-59页 |
