| 提要 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第1章 周围神经修复的历史及现状 | 第17-25页 |
| 第2章 周围神经的导管修复 | 第25-37页 |
| 2.1 生物型材料 | 第26-29页 |
| 2.1.1 静脉 | 第26-27页 |
| 2.1.2 羊膜 | 第27-28页 |
| 2.1.3 骨骼肌 | 第28页 |
| 2.1.4 小肠黏膜下层 | 第28-29页 |
| 2.2 非生物材料 | 第29页 |
| 2.3 神经导管 | 第29-37页 |
| 2.3.1 天然生物可降解高分子材料 | 第30-32页 |
| 2.3.2 可合成降解高分子材料 | 第32-37页 |
| 第3章 PLGA对大鼠雪旺细胞毒性和相容性的实验研究 | 第37-45页 |
| 3.1 材料 | 第37-39页 |
| 3.1.1 细胞和PLGA降解材料来源 | 第37-38页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第38页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第38页 |
| 3.1.4 主要试剂配制 | 第38-39页 |
| 3.2 方法 | 第39-40页 |
| 3.2.1 PLGA材料MTT细胞毒性实验 | 第39-40页 |
| 3.3 PLGA材料细胞相容性实验 | 第40页 |
| 3.3.1 玻片硅化以及PLGA薄膜的制备 | 第40页 |
| 3.3.2 PLGA细胞相容性实验 | 第40页 |
| 3.3.3 RSC96 细胞S100 免疫荧光实验 | 第40页 |
| 3.4 结果 | 第40-42页 |
| 3.4.1 PLGA材料MTT细胞毒性实验结果 | 第40-41页 |
| 3.4.2 PLGA材料细胞相容性实验结果 | 第41-42页 |
| 3.4.3 S100 免疫荧光实验 | 第42页 |
| 3.5 讨论 | 第42-44页 |
| 3.6 结论 | 第44-45页 |
| 第4章 PLGA-LN复合神经导管诱导周围神经 | 第45-79页 |
| 4.1 材料 | 第45-47页 |
| 4.1.1 实验动物来源 | 第45页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第45页 |
| 4.1.3 试剂配制 | 第45-46页 |
| 4.1.4 主要仪器设备 | 第46-47页 |
| 4.2 方法 | 第47-48页 |
| 4.2.1 PLGA-Laminin复合神经导管的制备 | 第47页 |
| 4.2.2 动物模型的建立及分组 | 第47-48页 |
| 4.3 检测指标 | 第48-55页 |
| 4.3.1 坐骨神经组织形态学观察 | 第48-49页 |
| 4.3.2 脊髓组织形态学观察 | 第49-51页 |
| 4.3.3 小腿三头肌组织形态学观察（HE染色）及肌肉体重指数测定 | 第51-52页 |
| 4.3.4 超微结构观察 | 第52页 |
| 4.3.5 Realtime-PCR实验 | 第52-54页 |
| 4.3.6 神经电生理检查 | 第54页 |
| 4.3.7 实验数据分析 | 第54-55页 |
| 4.4 结果 | 第55-72页 |
| 4.4.1 坐骨神经组织形态学观察 | 第55-62页 |
| 4.4.2 脊髓组织形态学观察 | 第62-65页 |
| 4.4.3 小腿三头肌组织形态学观察（HE染色）及TSCI测定 | 第65-66页 |
| 4.4.4 超微结构观察 | 第66-68页 |
| 4.4.5 Realtime-PCR实验 | 第68-70页 |
| 4.4.6 神经电生理检查 | 第70-72页 |
| 4.5 讨论 | 第72-78页 |
| 4.5.1 研究方法的选择和研究意义 | 第72-73页 |
| 4.5.2 实验结果的分析 | 第73-78页 |
| 4.6 结论 | 第78页 |
| 4.7 关于本实验需要进一步完善的方面 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-91页 |
| 作者简介 | 第91-93页 |
| 读博士期间发表的论文 | 第93-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
