英文缩写词表 | 第7-9页 |
中文摘要 | 第9-15页 |
Abstract | 第15-21页 |
前言 | 第22-27页 |
材料与方法 | 第27-51页 |
1. 材料 | 第27-30页 |
1.1 实验动物 | 第27页 |
1.2 试剂 | 第27-28页 |
1.3 仪器 | 第28-30页 |
2. 方法 | 第30-51页 |
2.1 抑郁造模与电针治疗及抑郁症行为学评估方案设计 | 第30-31页 |
2.2 CUS诱导的大鼠抑郁模型制备 | 第31-32页 |
2.3 电针治疗和假针 | 第32-33页 |
2.4 一般状况评分 | 第33页 |
2.5 强迫游泳实验 | 第33-34页 |
2.6 高架十字迷宫实验 | 第34页 |
2.7 敞箱实验 | 第34-35页 |
2.8 溴脱氧尿核苷(BrdU)给药方法 | 第35页 |
2.9 大鼠免疫组化脑片标本制备 | 第35页 |
2.10 DAB法进行免疫组织染色预实验 | 第35-36页 |
2.11 荧光双标检测海马齿状回BrdU与SOX-2 | 第36-37页 |
2.12 荧光双标检测海马齿状回GFAP与SOX-2 | 第37-38页 |
2.13 荧光双标检测海马齿状回p-ERK与Nestin | 第38页 |
2.14 脑片荧光双标免疫取样与统计方法 | 第38-39页 |
2.15 干细胞增殖标记方法 | 第39页 |
2.16 QNP与ANP标记方法 | 第39页 |
2.17 海马齿状回细胞外液微透析 | 第39-41页 |
2.18 新生SD大鼠海马神经干细胞的原代培养 | 第41页 |
2.19 新生SD大鼠海马神经干细胞Nestin鉴定 | 第41-42页 |
2.20 不同微透析添加培养的神经干细胞培养 | 第42-43页 |
2.21 CCK-8试剂盒检测神经干细胞的增殖活性 | 第43页 |
2.22 不同微透析液培养基中≥100 μm神经球的数目 | 第43页 |
2.23 不同微透析液培养基中干细胞p-ERK检测 | 第43-44页 |
2.24 细胞免疫组化干细胞p-ERK计数方法 | 第44页 |
2.25 数据统计 | 第44-45页 |
2.26 有关溶液的配制 | 第45-51页 |
结果 | 第51-71页 |
1. 电针改善CUS模型大鼠抑郁样行为 | 第51-60页 |
1.1 CUS模型建立及大鼠抑郁样评估 | 第51-54页 |
1.2 电针处理对大鼠抑郁样行为的改善 | 第54-59页 |
小结 | 第59-60页 |
2. 电针提升海马齿状回神经干细胞中BrdU阳性细胞数 | 第60-62页 |
小结 | 第60-62页 |
3. 电针处理对大鼠海马内QNP和ANP的数量影响 | 第62-65页 |
小结 | 第62-65页 |
4. 电针治疗包含干细胞中ERK通路的活化 | 第65-68页 |
小结 | 第65-68页 |
5. 电针微透析液上调体外神经球的生长与干细胞p-ERK水平 | 第68-71页 |
5.1 体外神经干细胞纯化 | 第68页 |
5.2 不同微透析液添加培养基中干细胞CCK-8细胞活力检测结果 | 第68页 |
5.3 不同微透析液添加培养基中≥100 μm神经球数目 | 第68页 |
5.4 不同微透析液添加培养基中干细胞p-ERK水平 | 第68页 |
小结 | 第68-71页 |
讨论 | 第71-90页 |
1. CUS诱导大鼠抑郁模型的可靠性 | 第71-73页 |
1.1 抑郁症的常用模型及CUS模型的广泛认可 | 第71-72页 |
1.2 本实验CUS诱导下相关抑郁样行为测试讨论 | 第72-73页 |
2. 针刺“百会”与“阳陵泉”的理论依据 | 第73-75页 |
3. 电针对海马干细胞增殖的影响 | 第75-76页 |
4. 不同干细胞亚类群在抑郁发病和电针治疗中的变化 | 第76-77页 |
5. 电针导致微环境中可能改善抑郁症的分子机理 | 第77-82页 |
5.1 神经营养因子等胞外微环境与抗抑郁症发病的极大关联 | 第77-79页 |
5.2 胞外微环境改善抑郁症过程中的ERK信号通路上调 | 第79-81页 |
5.3 干细胞在添加电针微透析液培养基中的增殖 | 第81-82页 |
6. 假电针的抗抑郁作用讨论 | 第82页 |
7. 结果提示电针对抑郁症中干细胞影响的示意图及理论拓展 | 第82-90页 |
结论 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-109页 |
综述 | 第109-118页 |
参考文献 | 第115-118页 |
附录:论文写作发表及参加会议 | 第118-119页 |
致谢 | 第119-121页 |