| 英文缩略词 | 第1-4页 |
| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-18页 |
| 第一篇 乙肝表面抗原基因在樱桃番茄中的转化及其表达 | 第18-40页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-32页 |
| 第一节 乙肝病毒表面抗原(HBsAg)在转基因植物中的表达研究进展 | 第18-31页 |
| 1 引言 | 第18页 |
| 2 乙肝表面抗原(HBsAg)基因的分子生物学及其功能 | 第18-20页 |
| 3 目标基因和表达载体的选择 | 第20-21页 |
| ·目标基因的选择 | 第20页 |
| ·表达载体的选择 | 第20-21页 |
| 4 HBsAg转基因植物表达体系 | 第21-27页 |
| ·HBsAg基因在转基因植物中的稳定表达 | 第21-26页 |
| ·HBsAg基因在转基因植物中的暂态表达 | 第26-27页 |
| 5 HBsAg在转基因植物中的表达水平 | 第27-28页 |
| 6 其它乙肝抗原在转基因植物中的表达 | 第28-29页 |
| 7 基于植物的HBsAg免疫原性研究和临床试验 | 第29-30页 |
| 8 当前存在问题和展望 | 第30-31页 |
| 第二节 本研究目的和意义 | 第31-32页 |
| 第二章 植物表达载体的构建与樱桃番茄的转化 | 第32-40页 |
| 1 试验材料和试验试剂 | 第32-33页 |
| ·试验材料 | 第32页 |
| ·主要试剂 | 第32页 |
| ·主要仪器 | 第32-33页 |
| ·基本培养基 | 第33页 |
| 2 试验方法 | 第33-35页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第33页 |
| ·根癌农杆菌LBA4404感受态制备 | 第33页 |
| ·根癌农杆菌LBA4404感受态细胞的转化 | 第33-34页 |
| ·根癌农杆菌质粒的提取和鉴定 | 第34页 |
| ·樱桃番茄无菌苗的获得 | 第34-35页 |
| ·樱桃番茄外植体的转化 | 第35页 |
| ·转化植株的DNA提取和PCR鉴定 | 第35页 |
| ·转化植株的Southern杂交 | 第35页 |
| ·ELISA检测 | 第35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-38页 |
| ·根癌农杆菌质粒pCAMBIA1301/HB的构建和转化 | 第35-36页 |
| ·转化植株的PCR鉴定和Southern杂交检测 | 第36-37页 |
| ·ELISA分析 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38页 |
| 5 结论 | 第38-40页 |
| 第二篇 HBsAg转基因樱桃番茄突变体特性研究 | 第40-97页 |
| 第一章 文献综述 | 第40-56页 |
| 第一节 番茄突变体研究进展 | 第40-44页 |
| 1 植物突变体来源途径 | 第40-42页 |
| ·自然突变 | 第40页 |
| ·人工诱变 | 第40-41页 |
| ·插入突变 | 第41-42页 |
| 2 番茄突变体研究进展 | 第42-44页 |
| ·自然突变在番茄突变体研究中的应用 | 第42-43页 |
| ·物理诱变和化学诱变在番茄突变体研究中的应用 | 第43页 |
| ·插入突变在番茄突变体研究中的应用 | 第43-44页 |
| 第二节 植物组织培养与形态发生 | 第44-49页 |
| 1 植物组织培养形态发生的基本理论 | 第44页 |
| 2 形态发生的遗传学理论 | 第44-48页 |
| ·体细胞胚发生的遗传学理论 | 第45页 |
| ·芽器官发生的遗传学理论 | 第45页 |
| ·根器官发生的遗传学理论 | 第45-47页 |
| ·花器官发生的遗传学理论 | 第47-48页 |
| 3 植物组织培养的技术创新 | 第48-49页 |
| ·气态或物理环境的操作 | 第48-49页 |
| ·薄细胞层和合成种子技术 | 第49页 |
| 4 结论和展望 | 第49页 |
| 第三节 盐胁迫下植物抗性机制研究进展 | 第49-54页 |
| 1 植物对盐胁迫的反应 | 第50-51页 |
| ·盐胁迫对植物形态的影响 | 第50页 |
| ·盐胁迫对植物生理生化特性的影响 | 第50-51页 |
| 2 利用组织培养研究植物耐盐机理与筛选耐盐突变体 | 第51页 |
| 3 利用基因转化研究植物抗盐性 | 第51-52页 |
| 4 耐盐突变体鉴定 | 第52-53页 |
| 5 番茄耐盐性研究进展 | 第53-54页 |
| ·番茄耐盐生理研究 | 第53页 |
| ·转基因耐盐番茄的研究进展 | 第53-54页 |
| 第四节 本研究目的和意义 | 第54-56页 |
| 第二章 温室栽培转基因樱桃番茄突变体生理生化特性研究 | 第56-64页 |
| 1 试验材料与方法 | 第56-58页 |
| ·试验材料 | 第56页 |
| ·试验试剂和仪器 | 第56页 |
| ·试验方法 | 第56-58页 |
| 2 结果与分析 | 第58-61页 |
| ·温室栽培转基因樱桃番茄突变体的PCR鉴定 | 第58页 |
| ·温室栽培转基因樱桃番茄突变体的倍性分析 | 第58-59页 |
| ·温室栽培转基因樱桃番茄突变体的生理生化特性 | 第59-61页 |
| 3 讨论 | 第61-63页 |
| 4 结论 | 第63-64页 |
| 第三章 转基因樱桃番茄突变体愈伤组织对盐胁迫的生理响应 | 第64-73页 |
| 1 试验材料与方法 | 第64-65页 |
| ·试验材料 | 第64页 |
| ·试验试剂和仪器 | 第64页 |
| ·试验方法 | 第64-65页 |
| 2 结果与分析 | 第65-71页 |
| ·盐胁迫对转基因樱桃番茄突变体愈伤组织生长的影响 | 第65-66页 |
| ·不同浓度NaCl胁迫对转基因樱桃番茄突变体愈伤组织抗氧化酶活性的影响 | 第66-68页 |
| ·不同浓度NaCl胁迫对转基因樱桃番茄突变体愈伤组织某些生理参数的影响 | 第68-71页 |
| 3 讨论 | 第71-72页 |
| 4 结论 | 第72-73页 |
| 第四章 转基因樱桃番茄突变体组培苗对盐胁迫的生理响应 | 第73-82页 |
| 1 试验材料与方法 | 第73-74页 |
| ·试验材料 | 第73页 |
| ·试验试剂和仪器 | 第73页 |
| ·试验方法 | 第73-74页 |
| 2 结果与分析 | 第74-80页 |
| ·盐胁迫对转基因樱桃番茄突变体组培苗生长的影响 | 第74页 |
| ·不同浓度NaCl胁迫对转基因樱桃番茄突变体组培苗抗氧化酶活性的影响 | 第74-76页 |
| ·不同浓度NaCl胁迫对转基因樱桃番茄突变体组培苗某些生理参数的影响 | 第76-80页 |
| 3 讨论 | 第80-81页 |
| 4 结论 | 第81-82页 |
| 第五章 转基因樱桃番茄突变体发育过程中的形态结构变异 | 第82-89页 |
| 1 试验材料与方法 | 第82-83页 |
| ·试验材料 | 第82页 |
| ·试验试剂和仪器 | 第82页 |
| ·试验方法 | 第82-83页 |
| 2 结果与分析 | 第83-86页 |
| ·转基因樱桃番茄突变体形态发生过程中的显微结构变化 | 第83-85页 |
| ·转基因樱桃番茄突变体形态发生过程中的超微结构变化 | 第85-86页 |
| 3 讨论 | 第86-88页 |
| 4 结论 | 第88-89页 |
| 第六章 转基因樱桃番茄突变体发育过程中的生理生化变化 | 第89-97页 |
| 1 试验材料与方法 | 第89-90页 |
| ·试验材料 | 第89页 |
| ·试验试剂和仪器 | 第89页 |
| ·试验方法 | 第89-90页 |
| 2 结果与分析 | 第90-95页 |
| ·转基因樱桃番茄突变体在器官发生和体细胞胚发生过程中抗氧化酶活性的变化 | 第90-92页 |
| ·转基因樱桃番茄突变体在器官发生和体细胞胚发生过程中某些生理参数的变化 | 第92-95页 |
| 3 讨论 | 第95-96页 |
| 4 结论 | 第96-97页 |
| 第三篇 全文总结 | 第97-100页 |
| 第一节 本研究创新点 | 第97页 |
| 第二节 本研究结论 | 第97-99页 |
| 第三节 下一步研究工作 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-115页 |
| 图版说明 | 第115-117页 |
| Explanation of plates | 第117-120页 |
| 图版 | 第120-127页 |
| 攻读博士学位期间取得的科研成果 | 第127-128页 |
| 攻读博士学位期间参与的主要科研项目 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129-131页 |
| 作者简介 | 第131页 |
