| 个人简历 | 第3-7页 |
| 主要英文缩略词 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 一、HA、BCP和TCP生物材料对成骨细胞的影响 | 第15-36页 |
| 1 材料 | 第15-18页 |
| 1.1 实验试剂和耗材 | 第15-16页 |
| 1.2 实验的主要仪器 | 第16页 |
| 1.3 实验试剂的制备 | 第16-18页 |
| 1.4 几种生物材料的实验前准备 | 第18页 |
| 1.5 原代成骨细胞的分离、提取和培养 | 第18页 |
| 2 方法 | 第18-23页 |
| 2.1 材料大体观和电镜扫描微孔结构 | 第18-19页 |
| 2.2 力学实验 | 第19页 |
| 2.3 成骨细胞在材料表面的接种 | 第19页 |
| 2.4 细胞增殖(MTT)实验检测 | 第19页 |
| 2.5 FDA/PI染色 | 第19-20页 |
| 2.6 鬼笔环肽染色 | 第20页 |
| 2.7 ALP活性检测 | 第20-21页 |
| 2.8 RT-PCR检测 | 第21-22页 |
| 2.9 扫描电镜观测 | 第22页 |
| 2.10 统计分析 | 第22-23页 |
| 3 结果 | 第23-32页 |
| 3.1 几种材料的大体观和扫描电镜观测结果 | 第23-24页 |
| 3.2 力学测试结果 | 第24-25页 |
| 3.3 MTT检测结果 | 第25-26页 |
| 3.4 FDA/PI染色观察 | 第26-28页 |
| 3.5 鬼笔环肽染色观察 | 第28-29页 |
| 3.6 ALP活性检测 | 第29-30页 |
| 3.7 RT-PCR检测基因表达情况 | 第30-32页 |
| 4 讨论 | 第32-33页 |
| 5 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-36页 |
| 二、研究HA、BCP和TCP生物材料在SD大鼠颅骨缺损模型上的修复效果 | 第36-49页 |
| 1 实验动物、材料和仪器 | 第36页 |
| 2 动物实验方法 | 第36-38页 |
| 2.1 动物实验前准备 | 第36-37页 |
| 2.2 SD大鼠颅骨缺损模型的建立 | 第37页 |
| 2.3 术后处理和观察 | 第37-38页 |
| 3 结果 | 第38-47页 |
| 3.1 几种材料大体观 | 第38页 |
| 3.2 动物实验椎束CT扫描 | 第38-41页 |
| 3.3 动物实验大体解剖 | 第41-42页 |
| 3.4 动物标本Micro-CT扫描 | 第42-43页 |
| 3.5 动物标本组织切片HE染色 | 第43-45页 |
| 3.6 动物标本组织切片免疫组化染色 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-49页 |
| 5 结论 | 第49页 |
| 全文总结 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-65页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 攻读硕士学位期间论文发表情况 | 第66页 |