| 摘要 | 第3-11页 |
| ABSTRACT | 第11-20页 |
| 第一章 绪论 | 第23-38页 |
| 1.1 分子影像应用于肿瘤早期诊断 | 第23-24页 |
| 1.2 ~(18)F-FDG PET/CT肿瘤显像的利弊 | 第24-25页 |
| 1.3 生长抑素受体及其靶向多肽概述 | 第25-27页 |
| 1.4 单光子生长抑素受体显像剂研究进展 | 第27页 |
| 1.5 正电子生长抑素受体显像剂(~(18)F除外)研究进展 | 第27-30页 |
| 1.5.1 ~(68)Ga标记奥曲肽类似物 | 第28-29页 |
| 1.5.2 ~(64)Cu标记奥曲肽类似物 | 第29页 |
| 1.5.3 ~(86)Y及~(110m)In标记奥曲肽类似物 | 第29-30页 |
| 1.6 正电子~(18)F标记的生长抑素受体显像剂研究进展 | 第30-36页 |
| 1.6.1 辅基标记法 | 第30-32页 |
| 1.6.2 点击化学 | 第32-33页 |
| 1.6.3 氟-硅化学法 | 第33-34页 |
| 1.6.4 氟-硼化学 | 第34-35页 |
| 1.6.5 Al~(18)F-NOTA螯合化学法 | 第35-36页 |
| 1.7 本课题的研究目的及技术路线 | 第36-38页 |
| 第二章 靶向SSTR的PET分子探针Al~(18)F-NOTA-PEG_6-TATE的制备及体外评价 | 第38-51页 |
| 2.1 前言 | 第38页 |
| 2.2 实验材料 | 第38-40页 |
| 2.2.1 实验仪器、材料及试剂 | 第38-39页 |
| 2.2.2 溶液的配置 | 第39-40页 |
| 2.3 实验方法 | 第40-43页 |
| 2.3.1 PET分子探针Al~(18)F-NOTA-PEG_6-TATE的制备 | 第40-42页 |
| 2.3.2 基本理化性质的测定 | 第42页 |
| 2.3.3 脂水分配系数测定 | 第42页 |
| 2.3.4 体外稳定性实验 | 第42-43页 |
| 2.4 结果 | 第43-47页 |
| 2.4.1 PET分子探针Al~(18)F-NOTA-PEG_6-TATE的制备 | 第43-46页 |
| 2.4.2 基本理化性质的测定 | 第46页 |
| 2.4.3 脂水分配系数测定 | 第46-47页 |
| 2.4.4 体外稳定性实验 | 第47页 |
| 2.5 讨论 | 第47-50页 |
| 2.6 小结 | 第50-51页 |
| 第三章 Al~(18)F-NOTA-PEG_6-TATE的细胞学及体内生物学评价 | 第51-68页 |
| 3.1 前言 | 第51-52页 |
| 3.2 实验材料 | 第52-54页 |
| 3.2.1 细胞株及实验动物 | 第52页 |
| 3.2.2 实验材料 | 第52-54页 |
| 3.3 实验方法 | 第54-58页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第54-55页 |
| 3.3.2 荷U87MG瘤鼠模型的建立 | 第55页 |
| 3.3.3 细胞摄取及流出实验 | 第55-56页 |
| 3.3.4 正常鼠体内生物学分布实验 | 第56页 |
| 3.3.5 荷U87MG瘤鼠体内生物学分布实验 | 第56-57页 |
| 3.3.6 荷U87MG瘤鼠Micro PET/CT显像 | 第57页 |
| 3.3.7 免疫组化 | 第57页 |
| 3.3.8 统计分析 | 第57-58页 |
| 3.4 结果 | 第58-64页 |
| 3.4.1 细胞摄取及流出实验 | 第58页 |
| 3.4.2 荷U87MG瘤鼠模型的建立 | 第58-59页 |
| 3.4.3 正常鼠体内生物学分布实验 | 第59-61页 |
| 3.4.4 荷U87MG瘤鼠体内生物学分布实验 | 第61-63页 |
| 3.4.5 荷U87MG瘤鼠Micro PET/CT显像 | 第63-64页 |
| 3.4.6 免疫组化 | 第64页 |
| 3.5 讨论 | 第64-67页 |
| 3.6 小结 | 第67-68页 |
| 第四章 结语 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-76页 |
| 缩略词中英文对照表 | 第76-77页 |
| 攻读学位期间成果 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-80页 |
