| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第1章 引言 | 第12-16页 |
| 1.1 心脏纤维化概述以及心脏纤维化与EndMT的关系 | 第12-13页 |
| 1.2 参与EndMT发生的主要信号通路 | 第13-14页 |
| 1.3 以RUNX3为靶点研究EndMT | 第14-16页 |
| 第2章 实验材料 | 第16-20页 |
| 2.1 实验对象 | 第16页 |
| 2.2 主要试剂及来源 | 第16-17页 |
| 2.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.4 实验器材的灭菌 | 第18页 |
| 2.5 相关实验试剂的配制 | 第18-19页 |
| 2.6 Western Blot中所用的一抗信息 | 第19-20页 |
| 第3章 实验方法 | 第20-30页 |
| 3.1 原代人心脏微血管内皮细胞的培养 | 第20-21页 |
| 3.2 空载慢病毒感染HCMECs预实验 | 第21-22页 |
| 3.3 内皮细胞间质转分化的诱导 | 第22-23页 |
| 3.4 RUNX3-慢病毒正式感染实验 | 第23页 |
| 3.5 免疫荧光双标染色分析 | 第23-24页 |
| 3.6 Transwell迁移实验 | 第24页 |
| 3.7 小管形成实验 | 第24-25页 |
| 3.8 总RNA提取及RT-PCR实验 | 第25-27页 |
| 3.9 Western Blot检测 | 第27-29页 |
| 3.10 统计学分析 | 第29-30页 |
| 第4章 结果 | 第30-41页 |
| 4.1 HCMECs细胞的生长特点 | 第30页 |
| 4.2 空载慢病毒感染HCMECs的MOI值及最佳感染条件 | 第30-31页 |
| 4.3 低氧能够诱导HCMECs发生间质转分化 | 第31-33页 |
| 4.4 各组HCMECs细胞RUNX3及HIF-1α 表达水平 | 第33-34页 |
| 4.5 检测RUNX3低表达对HCMECs细胞功能的影响 | 第34-35页 |
| 4.6 RUNX3基因敲减后减轻HCMECs间质转分化 | 第35-36页 |
| 4.7 各组HCMECs中Slug、Snail的mRNA及蛋白相对表达 | 第36-37页 |
| 4.8 HCMECs间质转分化过程中Notch信号通路的变化 | 第37-39页 |
| 4.9 HCMECs间质转分化过程中TGF-β 信号通路的变化 | 第39-41页 |
| 第5章 讨论 | 第41-45页 |
| 5.1 低氧诱导HCMECs间质转分化及对内皮细胞功能影响 | 第41-42页 |
| 5.2 RUNX3对内皮细胞功能以及EndMT的影响 | 第42-43页 |
| 5.3 RUNX3影响EndMT的可能机制 | 第43-45页 |
| 第6章 结论与展望 | 第45-46页 |
| 6.1 结论 | 第45页 |
| 6.2 展望与不足 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第50-51页 |
| 综述 内皮间质转分化在心血管疾病中的研究进展 | 第51-60页 |
| 参考文献 | 第58-60页 |
