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肽基凝胶诱导NT-3基因修饰BMSCs向神经细胞分化研究

摘要第3-4页
ABSTRACT第4-5页
中英文缩略词表第8-9页
第1章 前言第9-11页
第2章 材料与方法第11-23页
    2.1 材料第11-14页
        2.1.1 SD大鼠第11页
        2.1.2 细胞第11页
        2.1.3 腺病毒来源第11页
        2.1.4 多肽来源第11页
        2.1.5 主要试剂和实验设备第11-13页
        2.1.6 主要溶液的配制第13-14页
    2.2 实验方法第14-23页
        2.2.1 BMSCs分离及培养第14页
        2.2.2 骨髓间充质干细胞鉴定第14-15页
        2.2.3 细胞生长曲线测定(CCK-8)比色法第15-16页
        2.2.4 腺病毒转染BMSCs及相关蛋白检测第16-17页
        2.2.5 脊髓组织工程模块构建及细胞分化检测第17-21页
        2.2.6 统计学处理第21-23页
第3章 实验结果第23-30页
    3.1 BMSCs的培养与传代第23-24页
    3.2 流式细胞仪检测BMSCs表面标记抗原CD29、CD34的表达第24页
    3.3 BMSCs的成脂诱导和油红染色结果第24-25页
    3.4 BMSCs生长曲线第25页
    3.5 病毒转染后红色荧光蛋白表达情况第25-26页
    3.6 ELISA检测转染后BMSCs NT-3表达情况第26页
    3.7 多肽分子检测及自组装结果第26-27页
    3.8 BMSCs神经分化检测第27-30页
        3.8.1 BMSCs形态学观察第27-28页
        3.8.2 BMSCs神经分化后神经标志物q RT-PCR结果第28-29页
        3.8.3 BMSCs神经分化后神经标志物Western-Blot结果第29-30页
第4章 讨论第30-34页
第5章 结论与展望第34-35页
    5.1 结论第34页
    5.2 展望第34-35页
致谢第35-36页
参考文献第36-38页
攻读学位期间的研究成果第38-39页
综述 脊髓组织工程研究进展第39-48页
    参考文献第45-48页

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