| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 符号说明与缩略语 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-35页 |
| 1.1 病原微生物的快速检测 | 第15-16页 |
| 1.2 生物传感器概述 | 第16-19页 |
| 1.2.1 生物传感器的发展历史 | 第16-17页 |
| 1.2.2 生物传感器的工作原理 | 第17-18页 |
| 1.2.3 电化学生物传感器 | 第18-19页 |
| 1.3 DNA 电化学生物传感器 | 第19-25页 |
| 1.3.1 工作原理 | 第19页 |
| 1.3.2 DNA电化学生物传感器的探针设计 | 第19-21页 |
| 1.3.3 DNA探针的修饰固定方法 | 第21-22页 |
| 1.3.4 DNA电化学生物传感器信号转换机制 | 第22页 |
| 1.3.5 纳米材料用于DNA电化学生物传感器的构建 | 第22-25页 |
| 1.4 DNA四面体结构纳米材料 | 第25-31页 |
| 1.4.1 自组装原理 | 第26-27页 |
| 1.4.2 DNA四面体结构的功能化和智能化 | 第27-29页 |
| 1.4.3 在体内诊断与药物治疗方面的应用研究 | 第29-30页 |
| 1.4.4 在生物传感器体外检测方面的应用 | 第30-31页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第31-35页 |
| 1.5.1 研究目的及意义 | 第31-32页 |
| 1.5.2 本文的主要工作 | 第32-35页 |
| 第二章 DNA四面体探针的设计及自组装合成 | 第35-43页 |
| 2.1 引言 | 第35-36页 |
| 2.2 实验材料和仪器 | 第36-37页 |
| 2.2.1 实验试剂及材料 | 第36页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第36-37页 |
| 2.3 实验方法 | 第37-38页 |
| 2.3.1 DNA四面体结构探针的合成 | 第37页 |
| 2.3.2 DNA四面体结构探针的PAGE表征 | 第37-38页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第38-42页 |
| 2.4.1 DNA四面体结构探针合成效果的定性分析 | 第38-40页 |
| 2.4.2 DNA四面体结构探针合成效果的定量分析 | 第40-42页 |
| 2.5 本章小结 | 第42-43页 |
| 第三章 核酸四面体探针DNA电化学生物传感器的制备及表征 | 第43-67页 |
| 3.1 引言 | 第43-48页 |
| 3.1.1 循环伏安法 | 第43-45页 |
| 3.1.2 交流阻抗法 | 第45-47页 |
| 3.1.3 安培法 | 第47-48页 |
| 3.2 实验材料和仪器 | 第48-49页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第48-49页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第49页 |
| 3.3 实验方法 | 第49-52页 |
| 3.3.1 工作电极的预处理 | 第49-50页 |
| 3.3.2 TEP的修饰及生物传感器制作过程的表征 | 第50-51页 |
| 3.3.3 与单链DNA探针传感器检测性能的对比 | 第51页 |
| 3.3.4 对合成目标序列检测性能的评价 | 第51-52页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第52-64页 |
| 3.4.1 工作电极的预处理效果 | 第52-53页 |
| 3.4.2 TEP的修饰及传感器制作过程的CV表征结果 | 第53-57页 |
| 3.4.3 TEP的修饰及传感器制作过程的EIS表征结果 | 第57-60页 |
| 3.4.4 与单链探针传感器对目标序列检测信号响应的对比 | 第60-61页 |
| 3.4.5 对合成目标序列的检测灵敏度 | 第61-63页 |
| 3.4.6 对合成目标序列的特异性响应 | 第63-64页 |
| 3.5 本章小结 | 第64-67页 |
| 第四章 在甲型H7N9 流感病毒核酸检测中的应用 | 第67-85页 |
| 4.1 引言 | 第67-68页 |
| 4.2 实验材料和仪器 | 第68-69页 |
| 4.2.1 实验材料及试剂 | 第68-69页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第69页 |
| 4.3 实验方法 | 第69-75页 |
| 4.3.1 流感病毒的分离培养鉴定 | 第69-70页 |
| 4.3.2 RNA的提取与PCR扩增 | 第70-73页 |
| 4.3.3 单链DNA目标序列的不对称PCR法制备 | 第73-74页 |
| 4.3.4 TEP生物传感器对双链和单链目标物的检测 | 第74页 |
| 4.3.5 检测灵敏度的测定 | 第74页 |
| 4.3.6 检测特异性的测定 | 第74-75页 |
| 4.3.7 对低循环数不对称PCR产物的检测 | 第75页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第75-82页 |
| 4.4.1 流感病毒细胞培养液的血凝滴度 | 第75页 |
| 4.4.2 PCR扩增产物的验证结果 | 第75-76页 |
| 4.4.3 不对称PCR 目标产物的鉴定 | 第76-78页 |
| 4.4.4 TEP生物传感器对双链和单链目标物的检测性能 | 第78-79页 |
| 4.4.5 对不对称PCR产物的检测的灵敏度 | 第79-80页 |
| 4.4.6 对不对称PCR 产物的特异性响应 | 第80-81页 |
| 4.4.7 对低循环数不对称PCR产物的检测响应结果 | 第81-82页 |
| 4.5 本章小结 | 第82-85页 |
| 第五章 总结与展望 | 第85-87页 |
| 5.1 总结 | 第85-86页 |
| 5.2 展望 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-99页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文/专利申请目录 | 第99-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
