| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略词表 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-15页 |
| 1 涝胁迫下信号转导的研究进展 | 第9-10页 |
| 2 涝胁迫对生理生化代谢影响的研究进展 | 第10-11页 |
| 2.1 涝胁迫对光合作用影响的研究进展 | 第10页 |
| 2.2 涝胁迫对呼吸作用影响的研究进展 | 第10-11页 |
| 3 涝胁迫对植物形态结构的影响研究进展 | 第11-12页 |
| 3.1 涝胁迫对植物外部形态的影响 | 第11-12页 |
| 3.1.1 涝胁迫对植物根系的影响 | 第11页 |
| 3.1.2 涝胁迫对植物茎的影响 | 第11-12页 |
| 3.1.3 涝胁迫对植物叶片的影响 | 第12页 |
| 3.2 涝胁迫对植物组织结构的影响 | 第12页 |
| 4 iTRAQ技术及逆境生物学研究中的应用 | 第12-13页 |
| 5 研究目的和意义 | 第13-15页 |
| 第二章 涝胁迫对黄瓜幼苗超微结构的影响 | 第15-22页 |
| 1 试验材料 | 第15页 |
| 1.1 试验材料培养及处理 | 第15页 |
| 1.2 仪器设备 | 第15页 |
| 2 试验方法 | 第15页 |
| 2.1 超薄切片制片过程 | 第15页 |
| 2.2 扫描切片制片过程 | 第15页 |
| 3 结果与分析 | 第15-20页 |
| 3.1 涝胁迫对黄瓜线粒体结构的影响 | 第15-17页 |
| 3.2 涝胁迫对黄瓜叶绿体结构的影响 | 第17-19页 |
| 3.3 涝胁迫对黄瓜气孔结构的影响 | 第19-20页 |
| 4 讨论 | 第20-22页 |
| 第三章 黄瓜涝胁迫诱导的差异蛋白组学研究 | 第22-40页 |
| 1 试验材料 | 第22页 |
| 2 试验方法 | 第22-27页 |
| 2.1 iTRAQ试验流程 | 第22-24页 |
| 2.1.1 蛋白质提取过程 | 第22页 |
| 2.1.2 SDS电泳 | 第22-23页 |
| 2.1.3 蛋白质酶解 | 第23页 |
| 2.1.4 iTRAQ标记 | 第23页 |
| 2.1.5 SCX分离 | 第23页 |
| 2.1.6 基于Triple TOF 5600的LC-ESI-MSMS分析 | 第23-24页 |
| 2.1.7 数据分析流程 | 第24页 |
| 2.2 基因表达验证 | 第24-27页 |
| 2.2.1 RNA提取及反转录 | 第24-25页 |
| 2.2.2 引物设计 | 第25-26页 |
| 2.2.3 qRT-PCR反应体系 | 第26页 |
| 2.2.4 基因表达差异的分析方法 | 第26-27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-39页 |
| 3.1 iTRAQ数据质量分析 | 第27-28页 |
| 3.2 涝胁迫诱导的差异蛋白分析 | 第28-33页 |
| 3.3 差异蛋白相应基因的表达分析 | 第33-39页 |
| 3.3.1 信号转导相关基因的表达分析 | 第33-34页 |
| 3.3.2 次生代谢相关基因的表达分析 | 第34-36页 |
| 3.3.3 生长发育相关基因的表达分析 | 第36-37页 |
| 3.3.4 氧化胁迫相关基因的表达分析 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-40页 |
| 全文结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 攻读学位期间参与发表的学术论文 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |