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优化杆状病毒系统作为动物疫苗载体的研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-9页
文献综述第14-34页
    第一章 杆状病毒表达系统在疫苗领域应用的研究进展第14-34页
        1.1 杆状病毒简介第14-15页
        1.2 杆状病毒表达系统第15-18页
            1.2.1 杆状病毒表达系统的原则第15-16页
            1.2.2 杆状病毒表达系统的发展第16-18页
            1.2.3 昆虫细胞系的发展第18页
        1.3 杆状病毒表达系统生产的疫苗第18-27页
            1.3.1 杆状病毒表达系统生产的商品化疫苗第18-19页
            1.3.2 杆状病毒表达系统生产的亚单位疫苗第19-21页
            1.3.3 杆状病毒表达系统生产的病毒样颗粒疫苗第21-24页
            1.3.4 杆状病毒表面展示载体作为疫苗载体第24页
            1.3.5 BacMam作为疫苗载体第24-27页
        1.4 杆状病毒的佐剂效应第27页
        1.5 杆状病毒作为疫苗载体的安全性第27-28页
        1.6 杆状病毒表达系统未来展望第28-31页
            1.6.1 跨越蛋白特异性表达的障碍第28页
            1.6.2 减少基因组的不稳定性第28-30页
            1.6.3 最小化杆状病毒基因组第30页
            1.6.4 建立无病毒粒子的杆状病毒表达系统第30-31页
        1.7 结论第31页
        1.8 本研究目的意义及技术路线简介第31-34页
            1.8.1 研究的目的意义第31-32页
            1.8.2 技术路线第32-34页
试验研究第34-103页
    第二章 一种高效杆状病毒表达系统的构建第34-62页
        2.1 材料第34-35页
            2.1.1 细胞与菌株第34-35页
            2.1.2 载体与质粒第35页
            2.1.3 工具酶及主要试剂第35页
            2.1.4 主要仪器第35页
        2.2 方法第35-50页
            2.2.1 重组杆状病毒转移载体的构建第35-39页
            2.2.2 重组穿梭载体(Bacmid)的构建第39-43页
            2.2.3 重组杆状病毒的获得及鉴定第43-44页
            2.2.4 重组杆状病毒的鉴定与分析第44-46页
            2.2.5 验证翻译增强子Syn21和P10UTR在Cap蛋白表达中的作用第46-50页
            2.2.6 检验翻译增强子对CMV启动子介导的转基因表达的作用第50页
        2.3 结果第50-59页
            2.3.1 重组杆状病毒转移载体的构建第50-51页
            2.3.2 重组穿梭载体的构建及鉴定第51页
            2.3.3 重组杆状病毒的滴度测定第51-52页
            2.3.4 重组病毒感染Sf9细胞的荧光观察第52-53页
            2.3.5 Western blotting分析GFP的表达第53页
            2.3.6 多功能酶标仪定量分析GFP的表达量第53-54页
            2.3.7 联合应用Syn21和P10UTR翻译增强子对Cap蛋白表达的增强作用第54-58页
            2.3.8 翻译增强子对CMV启动子介导的GFP基因表达的作用第58-59页
        2.4 讨论第59-61页
            2.4.1 翻译增强子的筛选及功能验证第59-60页
            2.4.2 PCV2病毒样颗粒生产的优化第60-61页
        2.5 小结第61-62页
    第三章 RNA干扰抑制子P19的功能分析及应用第62-79页
        3.1 材料第62-63页
            3.1.1 质粒、菌株、病毒和细胞第62页
            3.1.2 工具酶及主要试剂第62-63页
            3.1.3 主要仪器第63页
        3.2 方法第63-69页
            3.2.1 P19在Sf9细胞中抑制RNA干扰功能的验证第63-65页
            3.2.2 P19表达对重组病毒的影响第65-66页
            3.2.3 P19的表达时相对重组病毒的影响第66-69页
        3.3 结果第69-77页
            3.3.1 P19基因的PCR扩增及克隆结果第69页
            3.3.2 P19基因的定点突变结果第69-70页
            3.3.3 P19表达载体的构建第70-71页
            3.3.4 GFP SiRNA功能的验证第71页
            3.3.5 P19功能的验证第71-72页
            3.3.6 瞬时表达P19的重组病毒的验证第72页
            3.3.7 P19瞬时表达对重组病毒滴度的影响第72-73页
            3.3.8 P19瞬时表达对外源蛋白表达量的影响第73页
            3.3.9 不同表达时相的P19重组表达病毒的构建及验证第73-74页
            3.3.10 P19的表达时相对重组病毒增殖滴度的影响第74-76页
            3.3.11 P19的表达时相对外源蛋白表达量的影响第76-77页
        3.4 讨论第77-78页
            3.4.1 TBSV P19的RNA干扰抑制功能第77页
            3.4.2 TBSV P19的表达对重组病毒的影响第77-78页
            3.4.3 TBSV P19的不同表达时相对重组病毒的影响第78页
        3.5 小结第78-79页
    第四章 拮抗补体的重组杆状病毒的构建第79-92页
        4.1 材料第79-80页
            4.1.1 质粒、菌株、病毒和细胞第79-80页
            4.1.2 工具酶及主要试剂第80页
            4.1.3 主要仪器第80页
        4.2 方法第80-84页
            4.2.1 引物设计第80-81页
            4.2.2 杆状病毒表面展示载体的构建及验证第81-82页
            4.2.3 VSVG-ED假型化杆状病毒表面展示载体的构建第82页
            4.2.4 表面展示补体抑制剂的重组载体的构建第82页
            4.2.5 重组杆状病毒的获得及鉴定第82-83页
            4.2.6 重组杆状病毒抑制小鼠小鼠补体活性检测第83页
            4.2.7 重组杆状病毒抑制猪血清补体活性检测第83-84页
        4.3 结果第84-89页
            4.3.1 杆状病毒表面展示载体的构建及验证第84页
            4.3.2 重组病毒的荧光观察第84-85页
            4.3.3 重组杆状病毒滴度的测定第85页
            4.3.4 重组杆状病毒的IFA分析第85-86页
            4.3.5 重组杆状病毒的Western blotting分析第86页
            4.3.6 重组杆状病毒的共聚焦显微镜分析第86-87页
            4.3.7 重组病毒拮抗小鼠血清补体能力的检测第87-88页
            4.3.8 重组病毒拮抗猪血清补体能力的检测第88-89页
        4.4 讨论第89-91页
            4.4.1 血清补体与杆状病毒第89页
            4.4.2 杆状病毒表面修饰第89-91页
        4.5 小结第91-92页
    第五章 猪瘟新型杆状病毒载体疫苗的研究第92-103页
        5.1 材料第92-93页
            5.1.1 试验动物及疫苗第92页
            5.1.2 质粒、细胞和毒株第92页
            5.1.3 主要试剂第92-93页
            5.1.4 主要仪器第93页
        5.2 方法第93-96页
            5.2.1 重组杆状病毒的构建第93-94页
            5.2.2 重组杆状病毒的鉴定第94页
            5.2.3 动物实验第94-96页
        5.3 结果第96-101页
            5.3.1 E2和Syn21-E2的PCR扩增第96页
            5.3.2 重组杆状病毒质粒的酶切鉴定第96-97页
            5.3.3 重组Bacmid的PCR鉴定第97页
            5.3.4 重组杆状病毒的PCR鉴定第97-98页
            5.3.5 Western blotting分析蛋白表达第98页
            5.3.6 重组杆状病毒转导IEC细胞的间接免疫荧光鉴定第98-99页
            5.3.7 重组病毒拮抗猪血清补体能力的检测第99页
            5.3.8 猪瘟特异性抗体水平检测第99-100页
            5.3.9 中和抗体水平检测第100-101页
            5.3.10 IFN-γ含量检测第101页
        5.4 讨论第101-102页
        5.5 小结第102-103页
结论第103-104页
本研究创新点第104-105页
参考文献第105-122页
附录第122-125页
缩略语及中英文对照第125-127页
致谢第127-129页
作者简介第129页

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