| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 縮略表 | 第13-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-29页 |
| 1 植物启动子研究进展 | 第14-25页 |
| 1.1 植物启动子的结构 | 第14-15页 |
| 1.2 植物启动子的类型 | 第15-24页 |
| 1.3 植物启动子克隆方法 | 第24-25页 |
| 2 植物根系特异表达基因研究进展 | 第25-26页 |
| 3 本研究的目的意义 | 第26-29页 |
| 第二章 大豆根特异表达基因的筛选 | 第29-33页 |
| 1 试验材料 | 第29页 |
| 2 试验方法 | 第29-30页 |
| 2.1 总RNA的提取 | 第29页 |
| 2.2 反转录 | 第29-30页 |
| 2.3 候选根系特异表达基因的RT-PCR | 第30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-31页 |
| 3.1 大豆叶片和根总RNA的提取结果 | 第30-31页 |
| 3.2 候选根特异基因的RT-PCR | 第31页 |
| 4 讨论 | 第31-33页 |
| 第三章 大豆根特异启动子GmPRP2p的克隆及其表达特性 | 第33-53页 |
| 1 试验材料 | 第33页 |
| 1.1 大豆和拟南芥品种 | 第33页 |
| 1.2 载体及菌株 | 第33页 |
| 2 试验方法 | 第33-38页 |
| 2.1 大豆基因组DNA的提取 | 第33-34页 |
| 2.2 GmPRP2启动子的克隆及序列分析 | 第34页 |
| 2.3 GmPRP2p-1062启动子序列5’缺失序列 | 第34-35页 |
| 2.4 GmPRP2p-1062启动子及5’缺失片段表达载体的构建 | 第35页 |
| 2.5 转化E.coli | 第35页 |
| 2.6 农杆菌感受态细胞的转化 | 第35-36页 |
| 2.7 浸花法转化拟南芥 | 第36页 |
| 2.8 转基因拟南芥植株分子检测 | 第36-37页 |
| 2.9 转GmPRP2p-1062、GmPRP2p-852、GmPRP2p-471、GmPRP2p-369拟南芥组织特异性表达检测 | 第37页 |
| 2.10 激素及胁迫处理下的表达特性检测 | 第37页 |
| 2.11 GUS组织化学染色 | 第37页 |
| 2.12 GUS活性测定 | 第37-38页 |
| 3 结果与分析 | 第38-51页 |
| 3.1 GmPRP2启动子的获得 | 第38-39页 |
| 3.2 GmPRP2启动子序列分析 | 第39-42页 |
| 3.3 GmPRP2启动子缺失片段的获得 | 第42页 |
| 3.4 GmPRP2启动子及系列缺失片段表达载体构建 | 第42-44页 |
| 3.5 转基因拟南芥植株分子检测 | 第44-45页 |
| 3.6 GmPRP2启动子组织表达特性 | 第45-49页 |
| 3.7 激素及逆境处理下GmPRP2启动子表达特性 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-53页 |
| 第四章 大豆根特异启动子GmTIPp的克隆及表达特性 | 第53-74页 |
| 1 试验材料 | 第53页 |
| 1.1 大豆品种 | 第53页 |
| 1.2 载体及菌株 | 第53页 |
| 2 试验方法 | 第53-56页 |
| 2.1 大豆根基因组DNA的提取 | 第53页 |
| 2.2 GmTIP启动子的克隆及序列分析 | 第53-54页 |
| 2.3 GmTIPp-2054启动子序列5’缺失序列 | 第54页 |
| 2.4 GmTIPp-2054启动子及5’缺失片段表达载体的构建 | 第54-55页 |
| 2.5 转化E.coli | 第55页 |
| 2.6 农杆菌感受态细胞的转化 | 第55页 |
| 2.7 浸花法转化拟南芥 | 第55页 |
| 2.8 转基因拟南芥植株分子检测 | 第55页 |
| 2.9 转GmTIPp-2054、GmTIPp-1546、GmTIPp-1201、GmTIPp-253拟南芥组织特异性表达检测 | 第55-56页 |
| 2.10 激素及胁迫处理下的表达特性检测 | 第56页 |
| 2.11 GUS组织化学染色 | 第56页 |
| 2.12 GUS活性测定 | 第56页 |
| 3 结果与分析 | 第56-72页 |
| 3.1 GmTIP启动子的获得 | 第56-57页 |
| 3.2 GmTIP启动子序列分析 | 第57-59页 |
| 3.3 GmTIP启动子缺失片段的获得 | 第59页 |
| 3.4 GmTIP启动子及系列缺失片段表达载体构建 | 第59-63页 |
| 3.5 转基因拟南芥植株分子检测 | 第63页 |
| 3.6 GmTIP启动子的组织表达特性 | 第63-68页 |
| 3.7 激素及逆境处理下GmTIP启动子表达特性 | 第68-72页 |
| 4 讨论 | 第72-74页 |
| 第五章 GmTIP和GmPRP2启动子在大豆发状根中的表达特性 | 第74-80页 |
| 1 试验材料 | 第74页 |
| 2 试验方法 | 第74-75页 |
| 2.1 发根农杆菌转化大豆子叶节 | 第74页 |
| 2.2 转基因发状根的GUS组织化学染色检测 | 第74-75页 |
| 2.3 发状根中GUS活性的测定 | 第75页 |
| 3 结果与分析 | 第75-79页 |
| 3.1 转基因发状根的GUS检测 | 第75-76页 |
| 3.2 GmPRP2启动子在发状根中的表达特性 | 第76-77页 |
| 3.3 GmTIP启动子在发状根中的表达特性 | 第77-79页 |
| 4 讨论 | 第79-80页 |
| 第六章 结论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 博士生期间发表的学术论文 | 第92-93页 |
| 博士后期间论文及专利 | 第93-94页 |
| 附图 | 第94-96页 |
| 个人简历 | 第96-97页 |
| 永久通信地址 | 第97页 |
