| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第17-45页 |
| 1.1 蛋白质组学分离分析方法 | 第17-20页 |
| 1.1.1 二维凝胶电泳技术 | 第18页 |
| 1.1.2 多维液相色谱技术 | 第18-19页 |
| 1.1.3 毛细管电泳及相关技术 | 第19-20页 |
| 1.2 磷酸化肽段富集分离策略的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.2.1 离子交换色谱富集法 | 第20-21页 |
| 1.2.2 固定金属离子亲和色谱法 | 第21页 |
| 1.2.3 金属氧化物富集法 | 第21-22页 |
| 1.3 固定化酶在蛋白质组学中的应用与进展 | 第22-23页 |
| 1.4 功能化磁性纳米材料在蛋白质组学样品前处理中的应用与进展 | 第23-29页 |
| 1.4.1 基于功能化磁性纳米材料的磷酸化蛋白/肽段富集策略 | 第24-26页 |
| 1.4.2 基于功能化磁性纳米材料的新型固定化酶反应器 | 第26-29页 |
| 1.5 金属有机框架材料的研究进展 | 第29-45页 |
| 1.5.1 MOFs材料的特点 | 第29-30页 |
| 1.5.2 MOFs材料的主要类型 | 第30-36页 |
| 1.5.3 MOFs材料的应用 | 第36-41页 |
| 1.5.4 复合MOFs材料的应用 | 第41-43页 |
| 1.5.5 MOFs材料在蛋白质组学中的应用 | 第43-44页 |
| 1.5.6 结语与展望 | 第44-45页 |
| 第2章 固载混合镧系金属的磁性纳米材料的合成及其在磷酸肽富集中的应用 | 第45-63页 |
| 2.1 前言 | 第45-46页 |
| 2.2 实验部分 | 第46-49页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第46页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第46-47页 |
| 2.2.3 磁性纳米材料Fe_3O_4@TCPP-DOTA-M~(3+)的合成和表征 | 第47页 |
| 2.2.4 标准蛋白酶切产物的制备 | 第47-48页 |
| 2.2.5 Hela细胞蛋白酶切产物的制备 | 第48页 |
| 2.2.6 高pH反相色谱分离肽段混合物 | 第48页 |
| 2.2.7 磷酸肽富集 | 第48-49页 |
| 2.2.8 质谱检测及数据分析 | 第49页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第49-61页 |
| 2.3.1 固载混合镧系金属的磁性纳米材料的制备与表征 | 第49-52页 |
| 2.3.2 固载混合镧系金属离子的磁性纳米材料富集磷酸肽效果考察 | 第52-55页 |
| 2.3.3 固载混合镧系金属离子的磁性纳米材料富集磷酸肽的灵敏度考察 | 第55-56页 |
| 2.3.4 固载混合镧系金属离子的磁性纳米材料富集磷酸肽选择性考察 | 第56-59页 |
| 2.3.5 固载混合镧系金属离子的磁性纳米材料使用重复性考察 | 第59-61页 |
| 2.3.6 固载混合镧系金属离子的磁性纳米材料用于HeLa细胞蛋白酶切产物磷酸肽的富集 | 第61页 |
| 2.4 本章小结 | 第61-63页 |
| 第3章 固载不同金属离子的磁性纳米材料的合成及其在磷酸肽富集中的应用 | 第63-85页 |
| 3.1 前言 | 第63-64页 |
| 3.2 实验部分 | 第64-67页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第64页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第64-65页 |
| 3.2.3 磁性纳米材料Fe_3O_4@TCPP-DOTA-Ms的合成和表征 | 第65页 |
| 3.2.4 标准蛋白酶切产物的制备 | 第65页 |
| 3.2.5 Hela细胞蛋白酶切产物的制备 | 第65-66页 |
| 3.2.6 磷酸肽富集 | 第66页 |
| 3.2.7 质谱检测及数据分析 | 第66-67页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第67-83页 |
| 3.3.1 固载不同金属离子的磁性纳米材料的制备与表征 | 第67-69页 |
| 3.3.2 固载不同金属离子的磁性纳米材料富集磷酸肽效果考察 | 第69-75页 |
| 3.3.3 固载不同金属离子的磁性纳米材料富集磷酸肽的灵敏度考察 | 第75-77页 |
| 3.3.4 固载不同金属离子的磁性纳米材料富集磷酸肽的使用重复性考察 | 第77-80页 |
| 3.3.5 固载不同金属离子的磁性纳米材料富集磷酸肽的特异性考察 | 第80-82页 |
| 3.3.6 固载不同金属离子的磁性纳米材料用于HeLa细胞蛋白酶切产物全磷酸肽的富集 | 第82-83页 |
| 3.4 本章小结 | 第83-85页 |
| 第4章 基于磁性MOFs材料的新型固定化酶的制备及其用于蛋白质的快速酶 | 第85-105页 |
| 4.1 前言 | 第85-86页 |
| 4.2 实验部分 | 第86-89页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第86-87页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第87页 |
| 4.2.3 磁性MOFs材料Fe_3O_4@DOTA-ZIF-90的制备和表征 | 第87页 |
| 4.2.4 基于磁性MOFs材料Fe_3O_4@DOTA-ZIF-90的固定化酶反应器的制备 | 第87-88页 |
| 4.2.5 磁性MOFs材料Fe_3O_4@DOTA-ZIF-90的表征 | 第88页 |
| 4.2.6 蛋白样品的制备 | 第88页 |
| 4.2.7 蛋白样品经固定化酶Fe_3O_4@ DOTA-ZIF90tyrpsin酶切或溶液酶切 | 第88-89页 |
| 4.2.8 质谱检测和数据分析 | 第89页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第89-104页 |
| 4.3.1 磁性MOFs材料Fe_3O_4@ DOTA-ZIF-90的制备和表征 | 第89-96页 |
| 4.3.2 固定化酶Fe_3O_4@ DOTA-ZIF90trypsin的制备 | 第96页 |
| 4.3.3 Fe_3O_4@ DOTA-ZIF90trypsin酶切标准蛋白BSA的效率考察 | 第96-103页 |
| 4.3.4 Fe_3O_4@ DOTA-ZIF90trypsin用于小鼠卵母细胞蛋白样品的快速酶解 | 第103-104页 |
| 4.4 本章小结 | 第104-105页 |
| 结论与展望 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-117页 |
| 附录 | 第117-143页 |
| 攻读博士学位期间所发表的学术论文 | 第143-145页 |
| 致谢 | 第145页 |
