| 致谢 | 第11-12页 |
| 缩略表 | 第12-13页 |
| 摘要 | 第13-14页 |
| Abstract | 第14页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-24页 |
| 引言 | 第15页 |
| 1 LIR1的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.1 OsLIR1是对光敏感的光降解蛋白 | 第16页 |
| 1.2 OsLIR1与OsLFNR互作 | 第16页 |
| 1.3 LIR1广泛存在并且相对保守 | 第16-17页 |
| 2 LFNR的研究进展 | 第17-20页 |
| 2.1 铁氧还蛋白-NADP+氧化还原酶的类型 | 第17页 |
| 2.2 LFNR功能的研究进展 | 第17-18页 |
| 2.3 LFNR亚细胞定位的研究进展 | 第18-20页 |
| 3 植物生物钟研究进展 | 第20-22页 |
| 3.1 生物钟的特征 | 第20页 |
| 3.2 植物中的生物钟 | 第20-21页 |
| 3.3 光和生物钟 | 第21-22页 |
| 4 本研究的目的意义 | 第22-24页 |
| 第二章 水稻Oslir1及拟南芥Atlir1表型分析 | 第24-31页 |
| 1 材料与方法 | 第24-27页 |
| 1.1 材料 | 第24页 |
| 1.2 方法 | 第24-27页 |
| 2 结果 | 第27-29页 |
| 2.1 水稻OsLIR1基因敲除株系结果分析 | 第27页 |
| 2.2 水稻Oslir1表型分析 | 第27-29页 |
| 2.3 拟南芥Atlir1突变体鉴定结果分析 | 第29页 |
| 2.4 拟南芥Atlir1表型分析 | 第29页 |
| 3 小结与讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 LIR1影响LFNR的亚细胞定位的研究 | 第31-38页 |
| 1 材料与方法 | 第31-35页 |
| 1.1 材料 | 第31页 |
| 1.2 方法 | 第31-35页 |
| 2 结果 | 第35-36页 |
| 2.1 水稻SDS-PAGE结果分析 | 第35页 |
| 2.2 水稻BN-PAGE结果分析 | 第35-36页 |
| 2.3 拟南芥SDS-PAGE结果分析 | 第36页 |
| 2.4 拟南芥BN-PAGE结果分析 | 第36页 |
| 3 小结与讨论 | 第36-38页 |
| 第四章 水稻Oslir1光合作用的研究 | 第38-41页 |
| 1 材料与方法 | 第38页 |
| 2 结果 | 第38-39页 |
| 3 小结与讨论 | 第39-41页 |
| 第五章 结论与展望 | 第41-43页 |
| 1 结论 | 第41-42页 |
| 2 展望 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 附录 试验方法及补充数据 | 第47-56页 |
| 1 农杆菌介导的水稻转基因技术 | 第47-49页 |
| 1.1 水稻成熟胚愈伤组织的准备 | 第47页 |
| 1.2 电转化农杆菌感受态细胞的制备 | 第47-48页 |
| 1.3 农杆菌的培养 | 第48页 |
| 1.4 共培养及抗性愈伤的筛选 | 第48页 |
| 1.5 抗性愈伤的分化及生根培养 | 第48-49页 |
| 1.6 炼苗、移栽 | 第49页 |
| 2 TPS提植物基因组DNA | 第49-50页 |
| 3 PCR产物PCR板回收 | 第50页 |
| 4 TRNzol法提取植物总RNA | 第50-52页 |
| 5 RNA反转成cDNA操作方法 | 第52-53页 |
| 6 酵母感受态细胞的制备和转化 | 第53-54页 |
| 6.1 感受态的制备 | 第53页 |
| 6.2 酵母感受态的转化 | 第53-54页 |
| 7 植物总蛋白蛋白提取及Western Blot分析 | 第54-56页 |
| 7.1 蛋白提取 | 第54页 |
| 7.2 SDS-PAGE | 第54-55页 |
| 7.3 Western Blot | 第55-56页 |