| 中文摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-44页 |
| 1 药用植物白鲜皮化学成分及药理活性研究概况 | 第13-26页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 白鲜皮中主要化学成分 | 第13-23页 |
| 1.2.1 油脂类化合物 | 第13-18页 |
| 1.2.2 生物碱类化合物 | 第18-20页 |
| 1.2.3 柠檬苦素类化合物 | 第20-22页 |
| 1.2.4 倍半萜类化合物 | 第22-23页 |
| 1.2.5 其他类化合物成分 | 第23页 |
| 1.3 白鲜皮中化学成分的活性研究概况 | 第23-26页 |
| 1.3.1 抑菌活性 | 第23-24页 |
| 1.3.2 杀虫活性 | 第24-25页 |
| 1.3.3 抗炎活性 | 第25页 |
| 1.3.4 神经保护作用 | 第25-26页 |
| 2 药用植物罗汉果化学成分及药理活性研究概况 | 第26-37页 |
| 2.1 前言 | 第26页 |
| 2.2 罗汉果中主要化学成分 | 第26-34页 |
| 2.2.1 油脂类成分 | 第26-28页 |
| 2.2.2 葫芦素烷三萜皂苷类化合物 | 第28-32页 |
| 2.2.3 黄酮类及其他类化合物 | 第32-34页 |
| 2.3 罗汉果中化学成分的活性研究概况 | 第34-37页 |
| 2.3.1 镇咳祛痰活性 | 第34页 |
| 2.3.2 免疫调节活性 | 第34-35页 |
| 2.3.3 抗氧化活性 | 第35页 |
| 2.3.4 降血糖活性 | 第35-36页 |
| 2.3.5 抗肿瘤活性 | 第36-37页 |
| 3 论文立题依据及意义 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-44页 |
| 第二章 白鲜皮和罗汉果中油脂类成分提取条件优化及组分分析 | 第44-65页 |
| 1 实验样品与试剂 | 第44-45页 |
| 2 实验仪器 | 第45页 |
| 3 试验方法 | 第45-47页 |
| 3.1 不同提取方法的选择 | 第45页 |
| 3.2 单因素考察实验 | 第45页 |
| 3.3 Box-Behnken Design设计条件 | 第45-46页 |
| 3.3.1 白鲜皮Box-Behnken Design实验设计条件 | 第45-46页 |
| 3.3.2 罗汉果Box-Behnken Design实验设计条件 | 第46页 |
| 3.4 油脂类化合物FT-IR分析 | 第46页 |
| 3.5 GC-MS分析条件 | 第46-47页 |
| 3.5.1 油脂类化合物甲酯化条件 | 第46-47页 |
| 3.5.2 白鲜皮油脂类成分GC-MS分析条件 | 第47页 |
| 3.5.3 罗汉果油脂类成分GC-MS分析条件 | 第47页 |
| 4 结果与讨论 | 第47-61页 |
| 4.1 不同提取方式提取效果比较 | 第47-48页 |
| 4.2 单因素的考察及影响因素和水平的确定结果 | 第48-50页 |
| 4.2.1 不同萃取时间对提取效率的影响 | 第48-49页 |
| 4.2.2 不同萃取压力对提取效率的影响 | 第49页 |
| 4.2.3 不同萃取温度对提取效率的影响 | 第49-50页 |
| 4.3 响应面实验结果 | 第50-56页 |
| 4.3.1 白鲜皮Box-Behnken Design实验结果分析 | 第50-53页 |
| 4.3.2 罗汉果中油脂类化合物Box-Behnken Design实验结果分析 | 第53-56页 |
| 4.4 油脂类化合物组分分析结果 | 第56-61页 |
| 4.4.1 白鲜皮油脂类化合物FT-IR分析结果 | 第56-57页 |
| 4.4.2 白鲜皮油脂类化合物GC-MS分析结果 | 第57-59页 |
| 4.4.3 罗汉果油脂类化合物FT-IR分析结果 | 第59页 |
| 4.4.4 罗汉果油脂类化合物GC-MS分析结果 | 第59-61页 |
| 5 小结 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| 第三章 利用ASE和UPLC-TQMS联用技术分析白鲜皮和罗汉果中主要化学成分 | 第65-93页 |
| 1 试验样品与试剂 | 第65页 |
| 2 实验仪器 | 第65-66页 |
| 3 实验条件与方法 | 第66-70页 |
| 3.1 以白鲜碱和罗汉果皂苷Ⅴ为目标成分的提取工艺优化 | 第66-68页 |
| 3.1.1 不同提取方法的选择 | 第66页 |
| 3.1.2 白鲜碱和罗汉果皂苷Ⅴ标准曲线的绘制 | 第66页 |
| 3.1.3 单因素考察实验 | 第66-67页 |
| 3.1.4 白鲜碱和罗汉果皂苷Ⅴ提取效率Box-Behnken Design实验设计 | 第67-68页 |
| 3.2 ASE与UPLC-TQMS联用分析白鲜皮和罗汉果中主要化学成分的研究 | 第68-70页 |
| 3.2.1 对照品及供试溶液的制备 | 第68页 |
| 3.2.2 色谱条件 | 第68-69页 |
| 3.2.3 质谱条件 | 第69-70页 |
| 4 结果与讨论 | 第70-89页 |
| 4.1 白鲜皮中以白鲜碱为目标成分的提取工艺流程优化 | 第70-76页 |
| 4.1.1 提取方式的选择结果 | 第70-71页 |
| 4.1.2 以白鲜碱为目标成分的提取工艺流程优化结果 | 第71-76页 |
| 4.2 罗汉果中以罗汉果皂苷Ⅴ为目标成分的提取工艺流程优化 | 第76-83页 |
| 4.2.1 提取方式的选择结果 | 第76-77页 |
| 4.2.2 以罗汉果皂苷Ⅴ为目标成分的提取工艺流程优化结果 | 第77-83页 |
| 4.3 ASE与UPLC-TQMS联用分析白鲜皮中主要化学成分的研究结果 | 第83-86页 |
| 4.3.1 质谱条件的优化 | 第83-85页 |
| 4.3.2 方法验证结果 | 第85-86页 |
| 4.3.3 样品测试结果 | 第86页 |
| 4.4 ASE与UPLC-TQMS联用分析罗汉果中主要化学成分的研究结果 | 第86-89页 |
| 4.4.1 质谱条件的优化 | 第86-88页 |
| 4.4.2 方法验证结果 | 第88-89页 |
| 4.4.3 样品测试结果 | 第89页 |
| 5 小结 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-93页 |
| 第四章 白鲜皮中主要化学成分的分离纯化和抗炎活性成分的筛选及评价 | 第93-117页 |
| 1 实验样品与试剂 | 第93-94页 |
| 2 实验仪器 | 第94页 |
| 3 实验方法 | 第94-97页 |
| 3.1 高效液相色谱分析条件 | 第94页 |
| 3.2 高速逆流色谱溶剂系统的选择 | 第94-95页 |
| 3.3 ASE快速溶剂萃取仪参数 | 第95页 |
| 3.4 白鲜皮逆流色谱峰的分析 | 第95页 |
| 3.5 抗炎活性检测方法 | 第95-97页 |
| 3.5.1 受试药物的制备 | 第95页 |
| 3.5.2 小鼠毛细血管渗透性炎症模型的建立 | 第95-96页 |
| 3.5.3 小鼠耳廓肿胀炎症模型的建立 | 第96页 |
| 3.5.4 小鼠棉球肉芽肿炎症模型的建立 | 第96-97页 |
| 4 结果与讨论 | 第97-113页 |
| 4.1 白鲜皮中主要化学成分的分离纯化 | 第97-107页 |
| 4.1.1 高效液相色谱分析结果 | 第97页 |
| 4.1.2 HSCCC分离参数优化结果 | 第97-98页 |
| 4.1.3 溶剂系统的优化 | 第98-100页 |
| 4.1.4 HSCCC分离白鲜皮组分纯度分析 | 第100-101页 |
| 4.1.5 逆流色谱分离白鲜皮单体化合物结构鉴定 | 第101-107页 |
| 4.2 抗炎活性检测结果 | 第107-113页 |
| 4.2.1 不同受试物对醋酸致小鼠腹腔毛细血管渗透性增加的影响 | 第107-108页 |
| 4.2.2 不同受试物对二甲苯致小鼠耳肿胀的影响 | 第108-110页 |
| 4.2.3 不同受试物对小鼠棉球肉芽肿的影响 | 第110-113页 |
| 5 小结 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-117页 |
| 第五章 罗汉果中主要皂苷类成分的分离纯化及对小鼠急性肺损伤作用机制及活性评价研究 | 第117-149页 |
| 1 实验样品与试剂 | 第118页 |
| 2 实验仪器 | 第118-119页 |
| 3 实验方法 | 第119-126页 |
| 3.1 罗汉果中主要皂苷类成分分离纯化方法 | 第119-120页 |
| 3.1.1 样品的提取及纯化处理 | 第119页 |
| 3.1.2 UPLC分析条件 | 第119-120页 |
| 3.1.3 制备型高效液相色谱分析条件 | 第120页 |
| 3.1.4 多级串联MS条件 | 第120页 |
| 3.2 罗汉果皂苷Ⅴ对小鼠急性肺损伤活性评价实验方法 | 第120-126页 |
| 3.2.1 实验试剂的配制 | 第120-121页 |
| 3.2.2 实验分组 | 第121-122页 |
| 3.2.3 受试小鼠急性肺损伤模型的建立 | 第122-123页 |
| 3.2.4 罗汉果皂苷Ⅴ对LPS诱导的小鼠急性肺损伤模型的影响 | 第123-126页 |
| 3.2.4.1 罗汉果皂苷Ⅴ作用于受试小鼠后肺部干湿比（W/D）的计算 | 第123页 |
| 3.2.4.2 HE染色 | 第123页 |
| 3.2.4.3 巨噬细胞和中性粒细胞的数量计算 | 第123-124页 |
| 3.2.4.4 ELISA法测定肿瘤坏死因子（TNF-a）和白介素（IL-1/IL6）和IL8表达水平 | 第124页 |
| 3.2.4.5 肺组织MPO的测定 | 第124页 |
| 3.2.4.6 罗汉果皂苷Ⅴ对NF-kB信号通路的影响 | 第124-126页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第126页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第126-143页 |
| 4.1 罗汉果中主要皂苷类成分分离纯化结果 | 第126-133页 |
| 4.1.1 制备性高效液相色谱纯化结果 | 第126-127页 |
| 4.1.2 HPLC-MS分析所分离罗汉果皂苷类化合物 | 第127-133页 |
| 4.2 罗汉果皂苷Ⅴ对小鼠急性肺损伤实验结果 | 第133-143页 |
| 4.2.1 小鼠氧合指数和血氧分压 | 第133-134页 |
| 4.2.2 小鼠处理前后肺部干湿比对 | 第134页 |
| 4.2.3 小鼠肺部HE染色结果 | 第134-136页 |
| 4.2.4 罗汉果皂苷Ⅴ作用小鼠急性肺组织损伤结果 | 第136-138页 |
| 4.2.5 肺组织总细胞数、巨噬细胞和中性粒细胞计数结果 | 第138-139页 |
| 4.2.6 细胞因子检测结果 | 第139-140页 |
| 4.2.7 小鼠肺部干湿比变化 | 第140-141页 |
| 4.2.8 MPO值结果 | 第141-142页 |
| 4.2.9 罗汉果皂苷Ⅴ对LPS诱导的小鼠急性肺损伤NF-kB信号通路Western-bolt验证结果 | 第142-143页 |
| 5 小结 | 第143-145页 |
| 参考文献 | 第145-149页 |
| 结语 | 第149-152页 |
| 致谢 | 第152-153页 |
| 在学期间公开发表论文及著作情况 | 第153页 |
| 获奖情况 | 第153页 |
