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长白山森林土壤纤维素酶基因多样性分析及基因克隆与表达

摘要第3-6页
Abstract第6-8页
英文缩写词表第9-13页
第一章 前言第13-45页
    1.1 生物质与生物质能源第13-17页
        1.1.1 生物质与生物质能源的涵义第13-14页
        1.1.2 生物质能源的开发第14-15页
        1.1.3 生物质能源的工业生产第15-17页
    1.2 纤维素的研究进展第17-22页
        1.2.1 天然纤维素的来源第17-19页
        1.2.2 纤维素的结构第19-21页
        1.2.3 纤维素的微生物降解第21-22页
    1.3 纤维素酶的研究进展第22-40页
        1.3.1 纤维素酶的组成和结构第22-24页
        1.3.2 纤维素酶的家族划分第24-28页
        1.3.3 纤维素酶的作用机制第28-31页
        1.3.4 纤维素酶的分子研究第31-33页
        1.3.5 宏基因组学技术在纤维素酶基因克隆中的应用第33-40页
    1.4 土壤微生物资源和长白山自然保护区微生物资源研究概况第40-43页
        1.4.1 土壤微生物资源第40-41页
        1.4.2 土壤微生物研究进展第41-42页
        1.4.3 长白山自然保护区概况第42页
        1.4.4 长白山森林土壤微生物资源研究概况第42-43页
    1.5 立题依据及研究内容第43-45页
        1.5.1 立题依据第43页
        1.5.2 研究内容第43-45页
第二章 长白山森林土壤环境纤维素酶基因多样性研究第45-76页
    2.1 实验材料第45-47页
        2.1.1 样品采集和处理第45页
        2.1.2 试剂盒及药品第45-46页
        2.1.3 培养基与试剂配制第46-47页
        2.1.4 仪器设备第47页
        2.1.5 所用引物第47页
        2.1.6 引物合成及质粒测序第47页
    2.2 实验方法第47-50页
        2.2.1 土壤微生物宏基因组DNA的提取和纯化第47-48页
        2.2.2 土壤纤维素酶活力检测第48页
        2.2.3 GH7_cbhI和GH48家族纤维素酶基因片段扩增及文库构建第48-49页
        2.2.4 GH7_cbhI和GH48家族纤维素酶基因多样性及系统发育分析第49-50页
    2.3 实验结果第50-71页
        2.3.1 长白山土壤样品的理化性质测定第50-51页
        2.3.2 土壤微生物宏基因组DNA的提取和纯化第51-52页
        2.3.3 GH7_cbhI和GH48家族纤维素酶基因片段的扩增及文库构建第52-54页
        2.3.4 GH7_cbhI和GH48家族纤维素酶基因多样性及系统发育分析第54-71页
    2.4 讨论第71-74页
    2.5 本章小结第74-76页
第三章 长白山森林土壤纤维素酶基因克隆和序列分析第76-96页
    3.1 实验材料第76-77页
        3.1.1 模板DNA第76页
        3.1.2 实验菌株,载体,工具酶以及试剂第76页
        3.1.3 引物合成及DNA测序第76-77页
    3.2 实验方法第77-81页
        3.2.1 GH48家族纤维素酶基因的克隆第77-80页
        3.2.2 GH5家族纤维素酶基因的克隆第80-81页
        3.2.3 克隆基因的转化和测序第81页
        3.2.4 克隆基因的序列分析第81页
    3.3 实验结果第81-92页
        3.3.1 GH48家族纤维素酶基因的克隆和序列分析第81-88页
        3.3.2 纤维素酶基因egl01的克隆和序列分析第88-92页
    3.4 讨论第92-94页
    3.5 本章小结第94-96页
第四章 新的GH48家族纤维素酶基因的表达及性质研究第96-120页
    4.1 实验材料第96-98页
        4.1.1 实验菌株和质粒第96页
        4.1.2 培养基、试剂盒和工具酶第96页
        4.1.3 溶液配制和药品第96-98页
        4.1.4 仪器设备第98页
        4.1.5 质粒DNA测序第98页
    4.2 实验方法第98-103页
        4.2.1 重组质粒的构建第98-99页
        4.2.2 重组蛋白的原核表达和电泳检测第99-101页
        4.2.3 重组蛋白的纯化及复性第101页
        4.2.4 重组蛋白的蛋白浓度测定第101-102页
        4.2.5 重组蛋白的纤维素酶活测定第102页
        4.2.6 重组蛋白的酶学性质测定第102-103页
        4.2.7 重组蛋白的同源模建第103页
    4.3 实验结果第103-118页
        4.3.1 重组酶的原核表达与纯化第103-107页
        4.3.2 重组酶的酶学性质研究第107-114页
        4.3.3 重组酶的同源模建第114-118页
    4.4 讨论第118-119页
    4.5 本章小结第119-120页
第五章 GH5家族纤维素酶基因的表达及性质研究第120-146页
    5.1 实验材料第120-121页
        5.1.1 实验菌株和质粒第120-121页
        5.1.2 培养基和缓冲液第121页
        5.1.3 试剂和工具酶第121页
        5.1.4 仪器设备第121页
        5.1.5 质粒DNA测序第121页
    5.2 实验方法第121-125页
        5.2.1 重组质粒的构建第121页
        5.2.2 重组蛋白的原核表达第121-122页
        5.2.3 重组蛋白的纯化第122页
        5.2.4 重组蛋白的蛋白浓度测定第122页
        5.2.5 重组蛋白的纤维素酶活测定第122页
        5.2.6 重组蛋白的酶学性质测定第122-123页
        5.2.7 重组酶Egl01序列删减突变体的构建第123页
        5.2.8 重组酶Egl01关键氨基酸的定点突变第123-125页
    5.3 实验结果第125-142页
        5.3.1 重组酶的原核表达与纯化第125-127页
        5.3.2 重组酶的酶学性质研究第127-133页
        5.3.3 重组酶Egl01突变体的酶学性质第133-136页
        5.3.4 重组酶Egl01的定点突变第136-142页
    5.4 讨论第142-144页
    5.5 本章小结第144-146页
全文总结第146-148页
参考文献第148-168页
致谢第168-170页
在学期间公开发表论文及著作情况第170页

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