| 英文缩略词表 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| 英文摘要 | 第8-12页 |
| 第一部分: 缺氧诱导胶质瘤干样细胞向血管内皮样细胞转分化 | 第12-30页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 材料和方法 | 第14-23页 |
| 1. 基本材料和主要试剂 | 第14-15页 |
| 2. 主要仪器 | 第15页 |
| 3. 实验方法 | 第15-23页 |
| 结果 | 第23-28页 |
| 1. 胶质瘤干样细胞向内皮细胞转分化的形态学变化 | 第23-24页 |
| 2. GSLC 转分化为 GDEC 过程中细胞表面标记物变化。 | 第24-25页 |
| 3. GSLC 转分化的内皮细胞（GDEC）内皮行为及超微结构。 | 第25-26页 |
| 4. 体外 GSLC 转分化的内皮细胞（GDEC）在不同培养基中标记物变化 | 第26-28页 |
| 讨论 | 第28-30页 |
| 第二部分: 基于肿瘤缺氧niche理念构建胶质瘤干样细胞与内皮细胞相互作用的在线分析模型 | 第30-56页 |
| 前言 | 第30-32页 |
| 材料和方法 | 第32-42页 |
| 1. 基本材料和主要试剂 | 第32页 |
| 2. 主要仪器 | 第32页 |
| 3. 实验方法 | 第32-42页 |
| 结果 | 第42-53页 |
| 1 双层微流控芯片配合缺氧小室体外缺氧共培养装置的搭建 | 第42-53页 |
| 讨论 | 第53-56页 |
| 第三部分：缺氧下诱导胶质瘤干样细胞转分化的内皮细胞对胶质瘤干样细胞抵抗替莫唑胺的影响及分子机制 | 第56-83页 |
| 前言 | 第56-58页 |
| 材料和方法 | 第58-73页 |
| 1. 主要试剂与材料 | 第58-59页 |
| 2. 实验仪器 | 第59页 |
| 3. 实验方法 | 第59-73页 |
| 结果 | 第73-81页 |
| 1. GDEC 比 HBMEC 表现更强促进 GSLC 抵抗 TMZ 作用能力。 | 第73-75页 |
| 2. Notch 信号配体 Jagged1 和 DLL4 在胶质瘤组织缺氧区的表达 | 第75-76页 |
| 3. 与GSLC缺氧共培养前后，GDEC细胞上 Notch信号配体Jagged1及 DLL4 的表达。 | 第76-79页 |
| 4. 与GSLC缺氧共培养前后，GDEC细胞上Notch信号配体Jagged1及 DLL4 的分泌情况。 | 第79-80页 |
| 5. 与 GDEC 细胞缺氧共培养后，GSLC 细胞 Hes1 基因的表达。 | 第80-81页 |
| 讨论 | 第81-83页 |
| 结论 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-88页 |
| 综述 | 第88-92页 |
| 参考文献 | 第91-92页 |
| 个人简介与完成的学术论文 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
