| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-19页 |
| 1 多糖的研究进展 | 第8-13页 |
| ·多糖的分离纯化 | 第8-11页 |
| ·多糖纯度鉴定及分子量测定 | 第11页 |
| ·多糖的结构分析 | 第11-12页 |
| ·多糖的生物活性 | 第12-13页 |
| 2 紫甘薯的研究概况 | 第13-17页 |
| ·紫甘薯成分的研究 | 第13-14页 |
| ·紫甘薯功能性研究 | 第14-17页 |
| 3 本论文研究的目的、意义、主要内容及创新之处 | 第17-19页 |
| ·研究的目的和意义 | 第17-18页 |
| ·研究的主要内容 | 第18页 |
| ·创新之处 | 第18-19页 |
| 第二章 紫甘薯多糖的提取工艺及含量测定 | 第19-28页 |
| 1 实验材料 | 第19页 |
| ·试验材料与试剂 | 第19页 |
| ·主要仪器设备 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-22页 |
| ·紫甘薯多糖的提取工艺流程 | 第19-20页 |
| ·实验数据的可靠性分析 | 第20-21页 |
| ·超声波提取紫甘薯多糖 | 第21-22页 |
| 3 结果与分析 | 第22-26页 |
| ·试验数据的可靠性分析 | 第22页 |
| ·超声波提取紫甘薯多糖 | 第22-26页 |
| ·超声时间对紫甘薯多糖得率的影响 | 第22-23页 |
| ·料液比对紫甘薯多糖得率的影响 | 第23-24页 |
| ·超声功率对紫甘薯多糖得率的影响 | 第24页 |
| ·pH值对紫甘薯多糖得率的影响 | 第24-25页 |
| ·超声波法辅助提取最佳工艺条件的确定 | 第25-26页 |
| 4 讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 紫甘薯多糖的分离纯化及其理化特性研究 | 第28-38页 |
| 1 实验材料 | 第28-29页 |
| ·试验材料与试剂 | 第28页 |
| ·主要仪器设备 | 第28-29页 |
| 2 实验方法 | 第29-30页 |
| ·紫甘薯粗多糖的制备 | 第29页 |
| ·紫甘薯粗多糖大孔树脂吸附脱色 | 第29页 |
| ·紫甘薯粗多糖脱蛋白 | 第29页 |
| ·紫甘薯粗多糖的DEAE-纤维素柱层析 | 第29-30页 |
| ·DEAE-纤维素柱层析前处理 | 第29页 |
| ·洗脱液pH值的选择 | 第29页 |
| ·DEAE-纤维素柱层析分离 | 第29-30页 |
| ·紫甘薯多糖的凝胶色谱纯化 | 第30页 |
| ·紫甘薯多糖高效凝胶过滤法测分子量及纯度鉴定 | 第30页 |
| ·紫外可见光谱分析 | 第30页 |
| ·红外光谱分析 | 第30页 |
| ·多糖样品Ⅰ和Ⅱ的基本理化性质分析 | 第30页 |
| 3 实验结果 | 第30-36页 |
| ·DEAE离子交换层析的分离结果 | 第30-32页 |
| ·SephadexG-75分离结果 | 第32-33页 |
| ·HPGFC法对多糖组分Ⅱ的分子量的测定及其纯度的鉴定 | 第33-34页 |
| ·紫外光谱分析 | 第34-35页 |
| ·红外光谱分析 | 第35-36页 |
| ·紫甘薯多糖理化性质分析 | 第36页 |
| 4 讨论 | 第36-38页 |
| 第四章 紫甘薯多糖组分的生物活性研究 | 第38-44页 |
| 1 实验材料 | 第38页 |
| ·试验材料与试剂 | 第38页 |
| ·主要仪器设备 | 第38页 |
| 2 实验方法 | 第38-39页 |
| ·紫甘薯多糖的抗氧化活性实验 | 第38-39页 |
| ·紫甘薯多糖清除(DPPH-)能力的测定 | 第38页 |
| ·紫甘薯多糖羟基自由基(·OH)清除能力的测定 | 第38-39页 |
| ·ABTS法抗氧化性的测定 | 第39页 |
| ·紫甘薯多糖抑制α-淀粉酶酶活力实验 | 第39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-43页 |
| ·紫甘薯多糖的抗氧化活性结果 | 第39-41页 |
| ·紫甘薯多糖在DPPH体系中抗氧化性的测定 | 第39-40页 |
| ·紫甘薯多糖清除-OH的能力 | 第40页 |
| ·紫甘薯多糖清除ABTS的能力 | 第40-41页 |
| ·紫甘薯多糖抑制α-淀粉酶效果 | 第41-43页 |
| ·同浓度的紫甘薯不同组分多糖抑制α-淀粉酶效果 | 第41页 |
| ·浓度对紫甘薯多糖组分抑制α-淀粉酶效果的影响 | 第41-43页 |
| 4 讨论 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 在校期间论文发表情况表 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |