| 致谢 | 第1-9页 |
| 图示目录 | 第9-10页 |
| 表格目录 | 第10-11页 |
| 中文摘要 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述：植物病毒侵染的病理生理和控制方法学的进展 | 第13-24页 |
| 1．1 植物病毒侵染后寄主细胞的病理学变化 | 第13-17页 |
| 1．1．1 植物病毒侵染后细胞中非病毒结构蛋白的生成 | 第13-15页 |
| 1．1．2 植物病毒侵染后寄主细胞的病理变化 | 第15-17页 |
| 1．1．2．1 细胞壁的病变 | 第15页 |
| 1．1．2．2 细胞核的病变 | 第15页 |
| 1．1．2．3 细胞质区的病变 | 第15-16页 |
| 1．1．2．4 线粒体的病变 | 第16页 |
| 1．1．2．5 叶绿体的病变 | 第16-17页 |
| 1．2 植物病毒侵染对寄主光合作用影响及其机理的研究进展 | 第17-19页 |
| 1．2．1 植物病毒对寄主光合作用的影响 | 第17页 |
| 1．2．2 植物病毒抑制寄主光合作用的分子机理 | 第17-18页 |
| 1．2．3 植物病毒抑制寄主光合作用研究中尚待解决的问题 | 第18-19页 |
| 1．3 植物病毒的防治措施的研究进展 | 第19-22页 |
| 1．3．1 利用植物转基因的方法防治植物病毒 | 第19-20页 |
| 1．3．2 利用交叉保护反应防治植物病毒 | 第20-21页 |
| 1．3．3 利用化学方法防治植物病毒 | 第21-22页 |
| 1．3．4 对植物病毒病控制的见解 | 第22页 |
| 1．4 研究目的及内容 | 第22-24页 |
| 1．4．1 研究目的 | 第22页 |
| 1．4．2 研究内容 | 第22-24页 |
| 第二章 TUMV对寄主植物细胞（器）形态结构及光合作用的影响 | 第24-38页 |
| 2．1 材料与方法 | 第24-28页 |
| 2．1．1 寄主植物 | 第24页 |
| 2．1．2 毒原 | 第24页 |
| 2．1．3 常用试剂 | 第24页 |
| 2．1．4 药品和仪器 | 第24-25页 |
| 2．1．5 寄主植物的培养和接种 | 第25页 |
| 2．1．6 透射电镜切片的制作、观察及叶绿体中淀粉粒形态结构的体视学分析 | 第25-26页 |
| 2．1．6．1 超薄切片的制作与染色 | 第25页 |
| 2．1．6．2 电镜观察 | 第25-26页 |
| 2．1．6．3 图象分析与计算 | 第26页 |
| 2．1．7 叶绿素含量的测定 | 第26-27页 |
| 2．1．8 植株叶片净光合速率、气孔导度、胞间CO_2浓度的测定 | 第27页 |
| 2．1．9 光合电子传递速率的测定 | 第27-28页 |
| 2．1．9．1 叶绿体的制备 | 第27页 |
| 2．1．9．2 叶绿素含量的测定 | 第27页 |
| 2．1．9．3 电极灵敏度的标定 | 第27-28页 |
| 2．1．9．4 电子传递速率的测定 | 第28页 |
| 2．1．10 叶绿素荧光动力学参数的测量方法 | 第28页 |
| 2．2 结果与分析 | 第28-34页 |
| 2．2．1 TuMV侵染在青菜和芥菜上表现的症状 | 第28-30页 |
| 2．2．2 寄主细胞中TuMV的病毒粒子和内含体 | 第30页 |
| 2．2．3 TuMV侵染对寄主叶绿体和叶绿体淀粉积累的影响 | 第30-32页 |
| 2．2．4 TaMV侵染对叶绿素含量的影响 | 第32页 |
| 2．2．5 TuMV侵染对寄主净光合速率、气孔导度和胞间CO_2浓度的影响 | 第32页 |
| 2．2．6 TuMV侵染对光合电子传递的影响 | 第32-33页 |
| 2．2．7 TuMV侵染对叶荧光诱导动力学参数的影响 | 第33-34页 |
| 2．3 讨论 | 第34-38页 |
| 2．3．1 TuMV侵染引起寄主细胞超微结构的改变 | 第34页 |
| 2．3．2 TuMV侵染对寄主植物叶绿体结构和叶绿素含量的影响 | 第34-35页 |
| 2．3．3 TuMV侵染对光合作用的抑制 | 第35-38页 |
| 第三章 叶绿体中TUMV外壳蛋白的检测 | 第38-47页 |
| 3．1 材料与方法 | 第38-42页 |
| 3．1．1 毒原 | 第38页 |
| 3．1．2 抗血清和胶体金探针 | 第38页 |
| 3．1．3 常用试剂 | 第38页 |
| 3．1．4 药品和仪器 | 第38页 |
| 3．1．5 病毒提纯 | 第38-39页 |
| 3．1．6 外壳蛋白的制备和测定 | 第39页 |
| 3．1．7 抗体制备 | 第39-40页 |
| 3．1．8 叶绿体的制备 | 第40页 |
| 3．1．9 叶绿体表面附着蛋白的去除 | 第40页 |
| 3．1．10 叶绿体总蛋白的抽提 | 第40页 |
| 3．1．11 SDS-PAGE和Western blot | 第40-41页 |
| 3．1．12 低温包埋 | 第41-42页 |
| 3．1．13 胶体金标记 | 第42页 |
| 3．1．14 切片染色 | 第42页 |
| 3．1．15 电镜观察 | 第42页 |
| 3．2 结果与分析 | 第42-46页 |
| 3．2．1 TuMV病毒粒子的提纯结果 | 第42页 |
| 3．2．2 TuMV外壳蛋白制备的结果 | 第42页 |
| 3．2．3 叶绿体提取的结果 | 第42-43页 |
| 3．2．4 叶绿体总蛋白电泳及斑点酶联测定结果 | 第43-44页 |
| 3．2．5 叶绿体中TuMV CP胶体金标记的观察结果 | 第44-46页 |
| 3．3 讨论 | 第46-47页 |
| 第四章 CMV弱毒对番茄保护作用的研究 | 第47-59页 |
| 4．1 材料与方法 | 第47-50页 |
| 4．1．1 CMV毒原 | 第47页 |
| 4．1．2 试验植物 | 第47页 |
| 4．1．3 番茄的播种与培养 | 第47页 |
| 4．1．4 弱病毒接种 | 第47-48页 |
| 4．1．5 弱病毒侵染率的检测 | 第48页 |
| 4．1．6 强毒接种 | 第48页 |
| 4．1．7 番茄生长状态（株高、展开度和茎粗）的测量 | 第48-49页 |
| 4．1．8 发病程度和病情指数的确定 | 第49页 |
| 4．1．9 番茄开花结果的测定 | 第49页 |
| 4．1．10 番茄果实折光糖度、可滴定酸和维生素C（Vc）含量的测定 | 第49-50页 |
| 4．1．10．1 番茄果实折光糖度Brix的测定 | 第50页 |
| 4．1．10．2 番茄果实可滴定酸度的测定 | 第50页 |
| 4．1．10．3 番茄果实Vc含量的测定 | 第50页 |
| 4．2 结果与分析 | 第50-57页 |
| 4．2．1 KO3和NDM-I的侵染率 | 第50-51页 |
| 4．2．2 CMV强毒接种效果 | 第51页 |
| 4．2．3 弱病毒接种对番茄株高的影响 | 第51页 |
| 4．2．4 弱病毒接种对番茄植株展开度的影响 | 第51页 |
| 4．2．5 弱病毒接种对番茄植株茎粗的影响 | 第51-52页 |
| 4．2．6 弱病毒保护对番茄发病程度的影响 | 第52-53页 |
| 4．2．7 弱病毒保护对番茄开花和结实的影响 | 第53-55页 |
| 4．2．8 弱病毒接种对番茄果实折光糖度、可滴定酸和Vc含量的影响 | 第55-57页 |
| 4．3 讨论 | 第57-59页 |
| 4．3．1 CMV弱毒对番茄保护的可行性及存在的问题 | 第57页 |
| 4．3．2 CMV与TuMV致病机理比较的探讨 | 第57-58页 |
| 4．3．3 CMV卫星RNA致弱机理的讨论 | 第58-59页 |
| 结论与总结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| SUMMARY | 第65-68页 |
| 附录A： 常用试剂的配制 | 第68-72页 |
| 附录B： 常用药品与仪器 | 第72页 |
