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埃博拉病毒糖蛋白的毒性研究

摘要第1-10页
Abstract第10-11页
英文缩略语表第11-13页
前言第13-15页
第一部分 GP系列质粒的构建第15-40页
 1 实验材料第15-25页
   ·质粒第15-20页
   ·菌株第20-21页
   ·细胞株第21页
   ·工具酶、酶切缓冲液第21页
   ·主要化学试剂第21页
   ·细胞培养用耗材第21页
   ·试剂盒第21页
   ·主要仪器及设备第21-22页
   ·主要溶液配方第22-24页
   ·主要抗体第24页
   ·PCR引物第24-25页
 2 实验方法第25-31页
   ·质粒构建第25-29页
   ·细胞相关实验第29-31页
 3 实验结果第31-39页
   ·构建pEAK13CD5L Mucin TEVhFc质粒第31-33页
   ·构建pEAK13CD5L GP△TM TEVhFc质粒第33-35页
   ·构建pEAK13CD5L GP△Mucin TEVhFc质粒第35-37页
   ·构建pEAK13CD5L GP△Mucin△TM TEVhFc质粒第37-39页
   ·质粒大量提取第39页
 4 结论第39-40页
第二部分 Mucin-Fc及GP△TM-Fc稳定表达细胞株的构建第40-44页
 1 实验材料第40页
 2 实验方法第40-41页
   ·DNA的纯化回收第40页
   ·细胞冻存第40页
   ·细胞复苏第40-41页
   ·稳定表达细胞株的构建第41页
 3 实验结果第41-43页
   ·Mucin-Fc稳定表达细胞株的构建第41-42页
   ·GP△TM-Fc稳定表达细胞株的构建第42-43页
 4 结论第43-44页
第三部分 GP_1-Fc、Mucin-Fc及Fc蛋白的表达及纯化第44-49页
 1 实验材料第44页
   ·试剂与耗材第44页
   ·主要仪器与设备第44页
 2 实验方法第44-45页
   ·蛋白纯化第44-45页
   ·蛋白浓度测定第45页
 3 实验结果第45-48页
   ·GP_1-Fc蛋白表达及纯化第45-46页
   ·Mucin-Fc蛋白表达及纯化第46页
   ·Fc蛋白表达及纯化第46-47页
   ·纯化后蛋白的浓度测定第47-48页
 4 结论第48-49页
第四部分 GP_1-Fc融合蛋白多聚体研究第49-51页
 1 实验材料第49页
 2 实验方法第49-50页
   ·线性梯度native-PAGE第49-50页
 3 实验结果第50页
   ·线性梯度 native-PAGE第50页
 4 结论第50-51页
第五部分 GP细胞毒性相关研究第51-55页
 1 实验材料第51页
   ·试剂与耗材第51页
   ·主要仪器与设备第51页
 2 实验方法第51-52页
   ·MTS检测细胞活力第51页
   ·台盼蓝染色法检测细胞死亡第51-52页
 3 实验结果第52-54页
   ·GP转染后细胞漂浮的情况第52-53页
   ·MTS检测细胞活力的结果第53-54页
   ·台盼蓝染色法检测漂浮细胞的死亡率第54页
 4 结论第54-55页
讨论第55-57页
参考文献第57-60页
综述第60-72页
 参考文献第68-72页
致谢第72页

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