摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-11页 |
中英文缩略词表 | 第11-12页 |
第1章 引言 | 第12-14页 |
第2章 不同浓度 LPS 刺激 HSC-T6 SUMO-1 的表达水平变化 | 第14-25页 |
·实验材料 | 第14-15页 |
·实验细胞 | 第14页 |
·主要试剂 | 第14-15页 |
·主要仪器 | 第15页 |
·实验方法 | 第15-22页 |
·器材的灭菌和去 RNA 酶 | 第15页 |
·细胞培养 | 第15-17页 |
·相关液体的配制 | 第17页 |
·实验分组及细胞处理 | 第17-18页 |
·real-time PCR 检测 SUMO-1 mRNA 表达 | 第18-20页 |
·Western blot 检测各组织蛋白的表达 | 第20-22页 |
·统计学处理 | 第22页 |
·结果 | 第22-23页 |
·Real time-PCR 结果 | 第22页 |
·Western blot 检测结果 | 第22-23页 |
·讨论 | 第23-25页 |
第3章 SUMO-1 表达变化后对 HSC-T6 增殖的影响及其机制研究 | 第25-42页 |
·实验材料 | 第25-26页 |
·细胞株 | 第25页 |
·主要试剂 | 第25-26页 |
·主要仪器 | 第26页 |
·实验方法 | 第26-34页 |
·器材的灭菌和去 RNA 酶 | 第26-27页 |
·细胞培养 | 第27-28页 |
·慢病毒载体的构建 | 第28-30页 |
·慢病毒转染 HSC-T619 | 第30-33页 |
·利用定量 PCR 检测转染沉默、过表达 SUMO-1 以及各对照组慢病毒后的 SUMO-1 表达水平 | 第33页 |
·利用 Western blot 实验检测各组蛋白的表达水平 | 第33页 |
·利用流式细胞仪检测细胞周期及细胞凋亡 | 第33页 |
·统计学处理 | 第33-34页 |
·结果 | 第34-39页 |
·荧光定量 PCR 结果分析 | 第34页 |
·Western blot 结果分析 | 第34-35页 |
·流式细胞仪检测结果 | 第35-38页 |
·小结 | 第38页 |
·在干扰 SUMO-1 表达水平的情况下 SUMO-2 及 SUMO-3 的变化 | 第38-39页 |
·讨论 | 第39-42页 |
第4章 结论 | 第42-43页 |
致谢 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-46页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第46-47页 |
综述 | 第47-54页 |
参考文献 | 第52-54页 |