| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-14页 |
| ·研究背景 | 第10-11页 |
| ·研究现状 | 第11-13页 |
| ·长效 EPO 的研究 | 第11-12页 |
| ·担载 EPO 的 PLGA 微球的研究 | 第12页 |
| ·担载 EPO 的其它载体微球的研究 | 第12-13页 |
| ·研究思路及方案 | 第13-14页 |
| 第二章 EPO 微球体外释放影响因素考察 | 第14-27页 |
| ·仪器与试剂 | 第14-16页 |
| ·仪器 | 第14页 |
| ·试剂 | 第14-15页 |
| ·溶液配制 | 第15-16页 |
| ·EPO 缓释微球的制备 | 第16-18页 |
| ·低温冷冻相分离法原理概述 | 第16-17页 |
| ·EPO 多糖玻璃体颗粒的制备 | 第17-18页 |
| ·EPO 缓释微球的制备 | 第18页 |
| ·S/O/W 法 EPO 微球的制备 | 第18页 |
| ·S/O/hO 法 EPO 微球的制备 | 第18页 |
| ·EPO 微球的体外释放活性考察 | 第18-21页 |
| ·促 UT-7 细胞生长法原理 | 第18-19页 |
| ·UT-7 细胞培养 | 第19页 |
| ·EPO 促 UT-7 细胞生长的标准曲线绘制 | 第19-20页 |
| ·EPO 微球的体外释放活性考察 | 第20-21页 |
| ·促红细胞生成素稳定性因素的考察 | 第21-26页 |
| ·PLGA 对 EPO 原液活性的影响 | 第21-22页 |
| ·不同高分子对 EPO 原液活性的影响 | 第22页 |
| ·不同 pH 的缓冲液介质对 EPO 原液活性的影响 | 第22页 |
| ·檬酸盐缓冲液对 EPO 活性的保护作用 | 第22页 |
| ·结果与讨论 | 第22-26页 |
| ·小结 | 第26-27页 |
| 第三章 EPO 缓释微球体内药效学及剂型优化 | 第27-46页 |
| ·仪器与试剂 | 第27-28页 |
| ·仪器 | 第27页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·溶液配制 | 第27-28页 |
| ·体内药效学活性检测原理 | 第28页 |
| ·体内药效学实验方法 | 第28-29页 |
| ·体内药效学实验结果与讨论 | 第29-34页 |
| ·EPO 微球的剂型优化 | 第34-45页 |
| ·葡聚糖玻璃体颗粒的影响 | 第34-38页 |
| ·EPO 水水乳的制备 | 第34页 |
| ·水水乳法玻璃体颗粒-微球的制备 | 第34页 |
| ·水水乳法玻璃体颗粒-微球的药效学实验结果 | 第34-38页 |
| ·高分子组成的影响 | 第38-45页 |
| ·m-S/O/W 法及 m-S/O/hO 法微球的制备 | 第38页 |
| ·体内药效学实验方法及结果 | 第38-45页 |
| ·小结 | 第45-46页 |
| 第四章 促红细胞生成素微球的体外释放研究 | 第46-56页 |
| ·仪器与试剂 | 第46-47页 |
| ·仪器 | 第46页 |
| ·试剂 | 第46-47页 |
| ·溶液配制 | 第47页 |
| ·EPO 微球的外观形态考察 | 第47-49页 |
| ·EPO 多糖玻璃体颗粒外观 | 第47-48页 |
| ·EPO 微球的外观 | 第48-49页 |
| ·EPO 缓释微球的包封率以及其中 EPO 的聚集情况研究 | 第49-53页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第49-51页 |
| ·SEC-HPLC 法原理 | 第49-50页 |
| ·SEC-HPLC 法操作步骤 | 第50页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第50-51页 |
| ·EPO 缓释微球包封率的测定方法及结果 | 第51页 |
| ·缓释微球中 EPO 聚集情况考察 | 第51-53页 |
| ·玻璃体颗粒 SEC-HPLC 色谱图 | 第51-52页 |
| ·回收微球 | 第52-53页 |
| ·EPO 缓释微球体外释放考察 | 第53-55页 |
| ·ELISA 双抗体夹心法的原理 | 第53页 |
| ·ELISA 检测法标准曲线的建立 | 第53-54页 |
| ·EPO 缓释微球体外释放曲线的测定及结果 | 第54-55页 |
| ·小结 | 第55-56页 |
| 全文总结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第61-63页 |
