| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-40页 |
| ·选题背景 | 第13-14页 |
| ·非胰岛素依赖型糖尿病胰岛素抵抗的研究进展 | 第14-27页 |
| ·胰岛素抵抗产生的机制 | 第15-20页 |
| ·非胰岛素依赖型糖尿病胰岛素抵抗的药物治疗 | 第20-27页 |
| ·糖尿病肾病的中西医研究进展 | 第27-38页 |
| ·中医研究进展 | 第27-30页 |
| ·西医研究进展 | 第30-38页 |
| ·问题与展望 | 第38页 |
| ·本文的主要研究内容和意义 | 第38-40页 |
| 第2章 枸杞多糖的提取、分离和纯化 | 第40-50页 |
| ·材料 | 第40-41页 |
| ·试剂 | 第40页 |
| ·主要试验器材 | 第40-41页 |
| ·方法 | 第41-44页 |
| ·枸杞多糖的制备 | 第41页 |
| ·LBP 的分级纯化 | 第41-42页 |
| ·LBP-4a 纯度鉴定 | 第42-44页 |
| ·物理性质测定 | 第44页 |
| ·结果 | 第44-47页 |
| ·枸杞多糖的提取 | 第44-45页 |
| ·LBP 分离和纯化的结果 | 第45-47页 |
| ·LBP-4a 理化性质的测定 | 第47页 |
| ·讨论 | 第47-49页 |
| ·本章小结 | 第49-50页 |
| 第3章 LBP-4A 对非胰岛素依赖型糖尿病大鼠降糖作用的研究 | 第50-71页 |
| ·材料 | 第50-51页 |
| ·药品和试剂 | 第50-51页 |
| ·主要试验器材 | 第51页 |
| ·试验动物 | 第51页 |
| ·方法 | 第51-54页 |
| ·胰岛素抵抗NIDDM 大鼠动物模型的建立与评价 | 第51-52页 |
| ·血糖血脂测定 | 第52页 |
| ·血清胰岛素测定 | 第52页 |
| ·糖耐量的测定 | 第52页 |
| ·小鼠急性毒性试验 | 第52-53页 |
| ·动物一般情况观察 | 第53页 |
| ·样品的采集 | 第53页 |
| ·电镜标本的制作和观察 | 第53页 |
| ·单细胞凝胶电泳法检测DNA 损伤 | 第53-54页 |
| ·数据处理 | 第54页 |
| ·结果 | 第54-66页 |
| ·胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠模型建立的判定 | 第54-55页 |
| ·急性毒理试验结果 | 第55页 |
| ·大鼠一般状态的变化 | 第55页 |
| ·LBP-4a 对胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠各项生理指标影响 | 第55-66页 |
| ·讨论 | 第66-70页 |
| ·胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠模型的建立 | 第66页 |
| ·LBP-4a 对胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠生化指标的影响 | 第66-68页 |
| ·LBP-4a 对胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠抗氧化能力的影响 | 第68-69页 |
| ·LBP-4a 对胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠DNA 损伤的修复 | 第69页 |
| ·LBP-4a 对胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠组织病理形态学的影响 | 第69-70页 |
| ·本章小结 | 第70-71页 |
| 第4章 LBP-4A 对胰岛素信号转导的影响 | 第71-85页 |
| ·材料 | 第72页 |
| ·试验动物与试剂 | 第72页 |
| ·主要仪器设备 | 第72页 |
| ·方法 | 第72-76页 |
| ·胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠模型的复制 | 第72页 |
| ·试验动物的分组和处理 | 第72-73页 |
| ·标本收集 | 第73页 |
| ·Western blot 免疫印迹法测定PKB 表达 | 第73-74页 |
| ·Western blot 免疫印迹法测定GLUT4 转位 | 第74-75页 |
| ·Western blot 免疫印迹法测定总p38MAPK 的表达 | 第75页 |
| ·免疫沉淀法检测p38MAPK 的活性 | 第75-76页 |
| ·数据处理 | 第76页 |
| ·结果 | 第76-81页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠骨骼肌PKB 蛋白磷酸化水平的影响 | 第76-77页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠骨骼肌细胞GLUT4 转位的影响 | 第77-79页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠骨骼肌p38MAPK 蛋白表达和活性的影响 | 第79-81页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠骨骼肌形态结构的影响 | 第81页 |
| ·讨论 | 第81-84页 |
| ·LBP-4a 作用PKB 信号通路促进GLUT4 转位 | 第82页 |
| ·LBP-4a 作用p38MAPK 信号激酶通路促进GLUT4 活性增强 | 第82-84页 |
| ·LBP-4a 对胰岛素抵抗大鼠骨骼肌形态结构的影响 | 第84页 |
| ·本章小结 | 第84-85页 |
| 第5章 LBP-4A 治疗糖尿病肾病机制的研究 | 第85-105页 |
| ·材料 | 第86页 |
| ·试验动物 | 第86页 |
| ·主要试剂 | 第86页 |
| ·主要仪器设备 | 第86页 |
| ·方法 | 第86-95页 |
| ·胰岛素抵抗的NIDDM 大鼠模型的复制 | 第86-87页 |
| ·试验分组 | 第87页 |
| ·大鼠血和尿标本指标的检测 | 第87-88页 |
| ·大鼠肾脏病理形态学研究 | 第88页 |
| ·RT-PCR 法检测PPAR-γ在mRNA 水平的表达 | 第88-90页 |
| ·免疫组化SP 法检测PPAR-γ在蛋白水平的表达 | 第90-91页 |
| ·Western blot 法检测肾皮质p38 MAPK 的表达 | 第91-92页 |
| ·免疫沉淀法检测p38MAPK 活性 | 第92-93页 |
| ·ELISA 法检测肾皮质PKC 活性 | 第93-94页 |
| ·数据处理 | 第94-95页 |
| ·结果 | 第95-102页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠肾功能的影响 | 第95页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠肾皮质的抗氧化作用的影响 | 第95-96页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠肾组织PPAR-γmRNA 表达的影响 | 第96-97页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠肾组织PPAR-γ蛋白表达的影响 | 第97-98页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠肾皮质p38MAPK 蛋白表达和活性的影响 | 第98-100页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠肾皮质PKC 活性的影响 | 第100页 |
| ·LBP-4a 对NIDDM 大鼠肾脏病理形态学的影响 | 第100-102页 |
| ·讨论 | 第102-104页 |
| ·本章小结 | 第104-105页 |
| 结论 | 第105-107页 |
| 附录(缩略词表) | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-120页 |
| 攻读博士学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121-122页 |
| 作者简介 | 第122页 |
