| 致谢 | 第1-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-42页 |
| 引言 | 第15页 |
| 1.低磷改变根系构型的生理机制 | 第15-28页 |
| ·根构型在低磷条件下的变化 | 第16-21页 |
| ·低磷对主根和侧根的影响 | 第16-19页 |
| ·低磷对根毛发育的影响 | 第19-21页 |
| ·簇生根的形成 | 第21页 |
| ·植物激素在低磷调控根构型变化中的作用 | 第21-28页 |
| ·生长素在低磷调控根构型中的作用 | 第21-25页 |
| ·其它激素对低磷下拟南芥根构型的影响 | 第25-28页 |
| ·细胞分裂素的作用 | 第25-26页 |
| ·乙烯的作用 | 第26-28页 |
| 2.低磷调控根构型变化的分子机理 | 第28-37页 |
| ·细菌和真菌的磷胁迫调控机制 | 第28-30页 |
| ·植物磷反应信号传导机制的研究进展 | 第30-37页 |
| ·植物磷胁迫调控根构型的系统调控与局部反应 | 第30-32页 |
| ·植物磷饥饿信号途径的研究进展 | 第32-37页 |
| 3.低磷调控根构型的遗传机制 | 第37-42页 |
| ·低磷下拟南芥根构型存在丰富的自然变异 | 第37-39页 |
| ·低磷调控拟南芥根构型基因的研究 | 第39-42页 |
| 第二章 突变体的筛选和表型分析 | 第42-62页 |
| 1.材料与方法 | 第42-50页 |
| ·材料 | 第42页 |
| ·方法 | 第42-50页 |
| ·拟南芥种子表面灭菌 | 第42页 |
| ·拟南芥的培养条件 | 第42-45页 |
| ·培养皿培养条件 | 第42-44页 |
| ·拟南芥固体培养条件 | 第44-45页 |
| ·突变体的筛选 | 第45页 |
| ·根系参数的测量 | 第45页 |
| ·各种缺素处理 | 第45页 |
| ·根尖组织切片制作方法 | 第45-46页 |
| ·根尖淀粉粒染色方法 | 第46-47页 |
| ·突变体与CycB1,1∷GUS株系的杂交和组织染色 | 第47-48页 |
| ·磷梯度实验 | 第48-49页 |
| ·磷含量的测定 | 第49-50页 |
| ·花色素苷含量的测定 | 第50页 |
| 2.结果 | 第50-60页 |
| ·突变体的筛选 | 第50页 |
| ·突变体根系构型的特点 | 第50-53页 |
| ·psi-1突变体在低磷下花色素苷累积减少 | 第53-54页 |
| ·psi-1突变体能够在低磷条件下维持根尖柱细胞的发育 | 第54页 |
| ·psi-1突变体地上部表现出低磷抗性而在高磷条件下与野生型没有显著差异 | 第54-55页 |
| ·psi-1突变体能够在低磷下保持分生组织细胞的伸长和分生组织细胞的分裂能力 | 第55-57页 |
| ·psi-1根系表型的营养特异性 | 第57页 |
| ·psi-1突变体有较强的吸收磷和在地上部累积磷的能力 | 第57-60页 |
| 3.讨论与小结 | 第60-62页 |
| 第三章 psi-1突变体磷饥饿特异诱导基因的表达 | 第62-72页 |
| 1.材料与方法 | 第62-68页 |
| ·材料 | 第62页 |
| ·方法 | 第62-68页 |
| ·拟南芥材料的准备 | 第62页 |
| ·植物总RNA的提取 | 第62-63页 |
| ·mRNA逆转录及实时定量PCR分析 | 第63-68页 |
| 2.结果 | 第68-70页 |
| 3.讨论与小结 | 第70-72页 |
| 第四章 psi-1突变体对生长素信号的响应 | 第72-78页 |
| 1.材料与方法 | 第72-73页 |
| ·材料 | 第72页 |
| ·方法 | 第72-73页 |
| ·与DR5∷GUS株系的杂交和GUS染色的方法 | 第72页 |
| ·拟南芥的培养和各种激素处理的方法 | 第72-73页 |
| ·拟南芥IAM处理 | 第73页 |
| 2.结果 | 第73-77页 |
| ·psi-1突变体能够在低磷下维持生长素向根尖的运输 | 第73-76页 |
| ·生长素前体物质对突变体根长的影响 | 第76-77页 |
| 3.讨论与小结 | 第77-78页 |
| 第五章 psi-1突变体的遗传分析 | 第78-87页 |
| 1.材料与方法 | 第78-81页 |
| ·材料 | 第78页 |
| ·方法 | 第78-81页 |
| ·F2群体的构建及遗传分析 | 第78页 |
| ·F2群体DNA提取 | 第78-79页 |
| ·QTL定位分析的方法 | 第79-80页 |
| ·图位克隆的方法 | 第80-81页 |
| 2.结果 | 第81-85页 |
| ·遗传分析 | 第81-83页 |
| ·QTL分析结果 | 第83-84页 |
| ·基因定位 | 第84-85页 |
| 3.讨论与小结 | 第85-87页 |
| 第六章 PSI-1与SUMO E3连接酶SIZ1的互作 | 第87-92页 |
| 1.材料与方法 | 第87-88页 |
| ·材料 | 第87页 |
| ·方法 | 第87-88页 |
| ·F2群体的构建和遗传分析 | 第87页 |
| ·F2群体DNA提取 | 第87页 |
| ·SIZ1引物的设计 | 第87-88页 |
| ·PCR和定量PCR | 第88页 |
| 2.结果 | 第88-91页 |
| ·遗传分析和SIZ1基因在F2群体中的表达情况 | 第88-91页 |
| ·psi-1突变体中SIZ基因的表达模式 | 第91页 |
| 3.讨论与小结 | 第91-92页 |
| 结论与展望 | 第92-95页 |
| 1.结论 | 第92-94页 |
| 2.展望 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-106页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第106页 |
