| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 绪论 | 第9-26页 |
| 1．1 DNA靶向化合物与DNA相互作用概述 | 第9-16页 |
| 1．1．1 不同DNA靶向化合物与DNA的相互作用 | 第9-13页 |
| 1．1．2 DNA靶向分子与DNA相互作用模式 | 第13-14页 |
| 1．1．3 常用研究方法及其特点 | 第14-16页 |
| 1．1．4 DNA靶向化合物研究展望 | 第16页 |
| 1．2 荧光分子探针 | 第16-25页 |
| 1．2．1 荧光分子探针在活细胞可视化研究中的意义 | 第16-19页 |
| 1．2．2 荧光分子探针的基本设计原理 | 第19-20页 |
| 1．2．3 已经用于活细胞的荧光分子探针 | 第20-25页 |
| 1．3 本课题研究的目的、意义和内容 | 第25-26页 |
| 2 苊并杂环化合物与DNA的相互作用研究 | 第26-41页 |
| 2．1 引言 | 第26-27页 |
| 2．2 目标化合物A1-A5的合成 | 第27-28页 |
| 2．3 化合物对DNA光敏切刻作用的研究 | 第28-30页 |
| 2．3．1 A1-A5的吸收光谱 | 第28页 |
| 2．3．2 单链环形DNA与双链DNA的比较 | 第28-29页 |
| 2．3．3 A1-A5对M13 mp18 DNA的光敏切刻 | 第29页 |
| 2．3．4 不同活性物质捕获剂对A1的DNA光敏活性的影响 | 第29-30页 |
| 2．4 化合物对DNA结合作用的研究 | 第30-34页 |
| 2．4．1 小牛胸腺DNA对A1-A4荧光强度的影响 | 第30-31页 |
| 2．4．2 A1-A5对SYBR Green DNA熔解温度曲线的影响 | 第31-32页 |
| 2．4．3 磷酸根离子对A1与DNA作用的影响 | 第32-33页 |
| 2．4．4 DNA表观结合常数的测定 | 第33-34页 |
| 2．5 细胞毒性评价 | 第34-35页 |
| 2．6 本章小结 | 第35页 |
| 2．7 实验部分 | 第35-41页 |
| 2．7．1 仪器与试剂 | 第35-36页 |
| 2．7．2 化学合成 | 第36-38页 |
| 2．7．3 DNA光敏切刻活性的测定 | 第38-39页 |
| 2．7．4 化合物与DNA结合作用的测定 | 第39-40页 |
| 2．7．5 细胞抑制分析(MTT) | 第40-41页 |
| 3 Hg~(2+)荧光分子探针对活细胞内Hg~(2+)实时视见的应用研究 | 第41-59页 |
| 3．1 引言 | 第41-42页 |
| 3．2 HPNP和EPNP在体外环境下的光谱性质 | 第42-44页 |
| 3．3 HPNP和EPNP在活细胞内的应用研究 | 第44-54页 |
| 3．3．1 HPNP和EPNP在细胞内的荧光稳定性分析 | 第44-46页 |
| 3．3．2 活细胞内HPNP和EPNP对Hg~(2+)的选择性 | 第46-47页 |
| 3．3．3 HPNP和EPNP对细胞内Hg~(2+)浓度和时间依赖的荧光增强 | 第47-48页 |
| 3．3．4 HPNP和EPNP在活哺乳动物细胞内的共聚焦荧光影像 | 第48-50页 |
| 3．3．5 HPNP和EPNP对半胱氨酸汞的响应 | 第50-52页 |
| 3．3．5．1 在体外HPNP和EPNP对Hg~(2+)和Cys-S-Hg-S-Cys的荧光比较 | 第50-51页 |
| 3．3．5．2 活细胞内HPNP对Hg~(2+)和Cys-S-Hg-S-Cys的荧光比较 | 第51-52页 |
| 3．3．6 EPNP在活植物细胞内的共聚焦荧光影像 | 第52-53页 |
| 3．3．7 EPNP在肾组织切片中的共聚焦荧光影像 | 第53-54页 |
| 3．4 本章意义 | 第54页 |
| 3．5 实验部分 | 第54-59页 |
| 3．5．1 实验材料 | 第54-56页 |
| 3．5．2 HPNP和EPNP在体外对Hg~(2+)的选择性 | 第56页 |
| 3．5．3 HPNP和EPNP在活细胞内的性能评价 | 第56-57页 |
| 3．5．4 HPNP和EPNP在活细胞内共聚焦荧光影像 | 第57页 |
| 3．5．5 EPNP对肾组织切片的染色 | 第57-59页 |
| 结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 附录 | 第68-69页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 大连理工大学学位论文版权使用授权书 | 第71页 |
