| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-15页 |
| Ⅰ.引言 | 第15-39页 |
| 1 植物的开花生理 | 第15-39页 |
| ·高等植物开花机理研究 | 第15-22页 |
| ·高等植物开花过程中物质等代谢的变化 | 第15-17页 |
| ·高等植物开花过程的分子机理研究 | 第17-22页 |
| ·十字花科蔬菜中开花相关基因的分离及其功能 | 第22-24页 |
| ·GA在植物成花中的作用 | 第24-26页 |
| ·LFY基因的特点及其在基因调控网络中的作用 | 第26-31页 |
| ·LFY基因的时空表达 | 第27-28页 |
| ·LFY基因在成花各阶段中的作用 | 第28-29页 |
| ·影响LFY表达的生理因子 | 第29-31页 |
| ·基因沉默研究 | 第31-37页 |
| ·RNA沉默现象的机制及其应用 | 第31-35页 |
| ·RNA沉默的生物学意义 | 第35-36页 |
| ·RNA沉默的应用 | 第36-37页 |
| ·本研究的立题依据 | 第37-39页 |
| Ⅱ 研究报告 | 第39-95页 |
| 第一章 GA处理对大白菜碳水化合物含量的影响 | 第39-44页 |
| ·材料和方法 | 第39页 |
| ·试验材料和GA处理 | 第39页 |
| ·碳水化合物含量的测定 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-41页 |
| ·可溶性糖的变化 | 第39-40页 |
| ·蔗糖含量的变化 | 第40-41页 |
| ·淀粉含量的变化 | 第41页 |
| ·讨论 | 第41-44页 |
| 第二章 GA处理后大白菜体内蛋白质、酶和DNA甲基化水平的变化 | 第44-54页 |
| ·材料与方法 | 第44-46页 |
| ·植物材料和GA处理 | 第44-46页 |
| ·可溶性蛋白含量的测定 | 第44页 |
| ·过氧化物同工酶(POD)活性的测定 | 第44页 |
| ·α-淀粉酶活性的测定 | 第44-45页 |
| ·酯酶EST活性测定 | 第45页 |
| ·DNA甲基化水平的测定 | 第45页 |
| ·内源GA含量的测定 | 第45-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-52页 |
| ·GA处理对大白菜可溶性蛋白含量的影响 | 第46-47页 |
| ·GA处理对大白菜同工酶活性的影响 | 第47-52页 |
| ·GA处理对大白菜POD活性的影响 | 第47-48页 |
| ·GA处理对大白菜α-淀粉酶活性的影响 | 第48页 |
| ·GA处理对大白菜EST活性的影响 | 第48-49页 |
| ·GA处理对大白菜DNA甲基化的影响 | 第49页 |
| ·GA处理对大白菜内源GA含量的影响 | 第49-50页 |
| ·GA处理对LFY基因表达的影响 | 第50-52页 |
| ·讨论 | 第52-54页 |
| 第三章 大白菜开花基因LFY的克隆、dsRNA-LFY植物表达载体的构建 | 第54-69页 |
| ·材料与方法 | 第54页 |
| ·材料 | 第54页 |
| ·菌种及质粒 | 第54页 |
| ·试剂 | 第54页 |
| ·方法 | 第54-65页 |
| ·RNA的提取方法 | 第54-55页 |
| ·LFY基因的克隆 | 第55-58页 |
| ·双链RNA抑制载体dsRNA-LFY的构建 | 第58-63页 |
| ·重组植物表达载体向农杆菌的转化 | 第63-65页 |
| ·结果与分析 | 第65-67页 |
| ·LFY基因的克隆及反义和正义LFY基因的PCR扩增 | 第65-66页 |
| ·双链RNA抑制载体的构建 | 第66-67页 |
| ·讨论 | 第67-69页 |
| ·关于引发RNA沉默片断长度及内含子片段的探讨 | 第68-69页 |
| ·使用RNA干扰技术时应注意的问题 | 第69页 |
| 第四章 大白菜再生体系和遗传转化体系的建立 | 第69-77页 |
| ·试验材料和方法 | 第69-71页 |
| ·无菌苗的获得 | 第70页 |
| ·外植体及接种方式 | 第70页 |
| ·遗传转化所用的植物材料、菌株及抗生素 | 第70页 |
| ·培养基 | 第70页 |
| ·双链dsRNA-LFY转化植株的获得 | 第70-71页 |
| ·T_0代转基因植株的扩繁 | 第71页 |
| ·实验结果与分析 | 第71-75页 |
| ·pH和琼脂糖浓度对对大白菜子叶-子叶柄的诱导及其转化频率 | 第71-73页 |
| ·大白菜dsRNA-LFY片段转化植株的获得 | 第73-75页 |
| ·讨论 | 第75-77页 |
| 第五章 转基因植株的分子检测和生理生化指标的检测 | 第77-86页 |
| ·材料和方法 | 第77-81页 |
| ·材料 | 第77页 |
| ·植物基因组DNA和总RNA的提取 | 第77-78页 |
| ·转化植株的PCR检测 | 第78页 |
| ·转化植株Southern blot检测 | 第78-80页 |
| ·转化植株Northern blot检测 | 第80-81页 |
| ·结果与分析 | 第81-83页 |
| ·转化植株的PCR检测 | 第81-82页 |
| ·抗性植株的Southern blot检测 | 第82页 |
| ·转化植株的Northern blot检测 | 第82-83页 |
| ·讨论 | 第83-86页 |
| 第六章 转基因植株的形态学及相关生理生化指标的分析 | 第86-94页 |
| ·材料与方法 | 第86页 |
| ·试验材料 | 第86页 |
| ·试验方法 | 第86页 |
| ·结果与分析 | 第86-89页 |
| ·转基因植株的形态变化 | 第86-87页 |
| ·转基因大白菜碳水化合物含量的变化 | 第87-88页 |
| ·转基因大白菜可溶性蛋白含量及同功酶活性的变化 | 第88页 |
| ·转基因植株激素水平的变化 | 第88-89页 |
| ·讨论 | 第89-94页 |
| ·转入LFY基因后，增加了大白菜开花时的叶片数 | 第89-90页 |
| ·转入LFY基因后，改变了大白菜体内碳水化合物的含量 | 第90页 |
| ·转入LFY基因后，改变了植株体内可溶性蛋白含量和同工酶的活性 | 第90-91页 |
| ·转入LFY基因后，改变了植株体内激素的水平 | 第91-94页 |
| 7 结论 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-113页 |
| 附录 | 第113-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第117页 |
